Ficetolaが2008年に環境DNAでウシガエルを検出した事をきっかけに、環境DNAの検出技術は特定の種のみならず、複数種の同時検出が可能となりました。また、近年ではさらに生物の状態を反映するRNAの検出ができるようになってきています。
全世界で活発に研究されている環境DNAについて少しでも理解しやすくなるようにこのページを作りました。ぜひ仕事や研究に有効活用していただければと思います。時々更新します。
この記事の内容
2008年以降の環境DNA論文数の推移
大型脊椎動物を対象とした環境DNAメタバーコーディングが使用され始めた2014年ごろから論文公開本数が上昇傾向にあります。メタバーコーディングを使って生物相を検出する研究が多くなったからでしょうか。
環境DNA論文のサマリーシート(~2020年)
【Update】2008~2020年までの環境DNA論文 約630報のタイトルに簡単な訳をつけて日本語で検索できるようにしました。
最終更新: 2023/11/04
No. | Title | 和訳(DeepL+意訳) | Author |
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1 | Using environmental DNA analysis to assess the occurrence and abundance of the endangered amphidromous fish Plecoglossus altivelis ryukyuensis | 環境DNA分析を使用して絶滅危惧種である両側回遊性のリュウキュウアユの出現と個体数の評価 | Akamatsu et al. |
2 | Uncovering the complete biodiversity structure in spatial networks – the example of riverine systems | 空間ネットワークの完全な生物多様性構造の解明–河川システムの例 | Altermatt et al. |
3 | Steps towards a more efficient use of chironomids as bioindicators for freshwater bioassessment: Exploiting eDNA and other genetic tools | 淡水生物評価のバイオ指標としてのユスリカのより効率的な使用に向けた歩み:eDNAおよびその他の遺伝的ツールの活用 | Czechowski et al. |
4 | Environmental DNA reveals seasonal shifts and potential interactions in a marine community | 環境DNAは季節的な変化と海洋コミュニティの潜在的な相互作用を明らかにする | Djurhuus et al. |
5 | Detection of freshwater mussels (Unionidae) using environmental DNA in riverine systems | 河川システムにおける環境DNAを使用したカラスガイ(イシガイ科)の検出 | Gasparini et al. |
6 | Finding Crush: Environmental DNA Analysis as a Tool for Tracking the Green Sea Turtle Chelonia mydas in a Marine Estuary | Finding Crush:海洋河口のアオウミガメChelonia mydasを追跡するためのツールとしての環境DNA分析 | Harper et al. |
7 | Use of environmental DNA (eDNA) in streams to detect feral swine (sus scrofa) | イノシシを検出するための河川での環境DNA(eDNA)の使用 | Hauger et al. |
8 | From eDNA to citizen science: emerging tools for the early detection of invasive species | 環境DNAから市民科学まで:侵入種の早期発見のための新しいツール | Larson et al. |
9 | A comparison of eDNA to camera trapping for assessment of terrestrial mammal diversity | 陸棲哺乳類の多様性評価のためのカメラトラップと環境DNAの比較 | Leempoel et al. |
10 | Multiple lines of genetic inquiry reveal effects of local and landscape factors on an amphibian metapopulation | 複数の遺伝的調査は両生類のメタ個体群に対する局所的および景観的要因の影響を明らかにする | Parsley et al. |
11 | The future of fish-based ecological assessment of European rivers: from traditional EU Water Framework Directive compliant methods to eDNA metabarcoding-based approaches | 欧州の河川の魚に基づく生態学的評価の未来:従来のEU水枠組み指令に準拠した方法から環境DNAメタバーコーディングに基づくアプローチまで | Pont et al. |
12 | Analytical validation and field testing of a specific qPCR assay for environmental DNA detection of invasive European green crab (Carcinus maenas) | 侵略的ヨーロッパミドリガニ(Carcinus maenas)の環境DNA検出のための特異的qPCRの分析検証と現場試験 | Roux et al. |
13 | Assessing the potential of environmental DNA metabarcoding for monitoring Neotropical mammals: a case study in the Amazon and Atlantic Forest, Brazil | 新熱帯哺乳類のモニタリングにおける環境DNAメタバーコーディングの可能性の評価:ブラジル、アマゾンと大西洋岸森林におけるケーススタディ | Sales et al. |
14 | Increased eDNA detection sensitivity using a novel highvolumewater sampling method | 新規的な大容量水サンプリング法を用いた環境DNAの検出感度の増加 | Schabacker et al. |
15 | A round-robin evaluation of the repeatability andreproducibility of environmental DNA assays for dreissenid mussels | ムラサキイガイの環境DNA評価の反復性と再現性のラウンドロビン評価 | Sepulveda et al. |
16 | A mesocosm comparison of laboratory-based and on-site eDNA solutions for detection and quantification of striped bass (Morone saxatilis) in marine ecosystems | 海洋生態系におけるストライプバス(Morone saxatilis)の検出と定量化のための、実験室ベースとオンサイトでの環境DNA法によるメソコスム比較 | Skinner et al. |
17 | Experimental assessment of optimal lotic eDNA sampling and assay multiplexing for a critically endangered fish | 絶滅の危機に瀕する魚類のための局所的な環境DNAサンプリングと複数の検証法 | Wood et al. |
18 | Development of a TaqMan qPCR protocol for detecting Acipenser ruthenus in the Volga headwaters from eDNA samples | ボルガ源流域におけるAcipenser ruthenusを環境DNAサンプルから検出するためのTaqMan qPCRプロトコルの開発 | Schenekar et al. |
19 | Environmental DNA‑based xenomonitoring for determining Schistosoma presence in tropical freshwaters | 熱帯淡水域における 住血吸虫属の存在を判定するための環境DNAベースの異種生物モニタリング | Alzaylaee_et al. |
20 | Spatial and temporal patterns of environmental DNA detection to inform sampling protocols in lentic and lotic systems | 流域および止水域のサンプリングプロトコルに情報を与えるための環境DNA検出の空間的・時間的パターン | Bedwell et al. |
21 | Groundtruthing of pelagic forage fish detected by hydroacoustics in a whale feeding area using environmental DNA | 環境DNAを用いたクジラ餌場のハイドロアコースティクスで検出された遠洋性採餌魚のグランドトゥルーチング | Berger et al. |
22 | Maximizing fish detection with eDNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングによる魚群探知の最大化 | Bessey et al. |
23 | Exploring Environmental DNA (eDNA) to Assess Biodiversity of Hard Substratum Faunal Communities on the Lucky Strike Vent Field (Mid-Atlantic Ridge) and Investigate Recolonization Dynamics After an Induced Disturbance | ラッキーストライクベントフィールド(中大西洋海嶺)における硬質基質動物群集の生物多様性を評価するための環境DNA(eDNA)の探索と撹乱後の再コロニー化ダイナミクスの調査水生環境DNAのサンプル前処理とPCR前処理の実践ガイド | Cowart et al. |
24 | A practival guide to sample presrvation and pre-PCR processing of aquatic environmental DNA | 水生環境DNAのサンプル前処理とPCR前処理の実践ガイド | Kumer et al. |
25 | Are migratory waterfowl vectors of seagrass pathogens? | 渡り鳥の水鳥は海草の病原体の媒介者なのか? | Menning et al. |
26 | Space invaders: Searching for invasive Smallmouth Bass (Micropterus dolomieu) in a renowned Atlantic Salmon (Salmo salar) river | 宇宙の侵略者。アトランティックサーモン(Salmo salar)の有名な河川での侵略的スモールマウスバス(Micropterus dolomieu)の探索 | O’Sullivan et al. |
27 | Sedimentary eDNA provides different information on timescale and fish species composition compared with aqueous eDNA | 堆積物の環境DNAは、水中の環境DNAと比較して、時間スケールや魚種の組成について異なる情報を提供する | Sakata et al. |
28 | Complementary molecular methods reveal comprehensive phylogenetic diversity integrating inconspicuous lineages of early-diverged wood-decaying mushrooms | 補完的分子法を用いて、早発木質腐朽キノコの隠れた系統を統合した系統多様性の解明 | Shirouzu et al. |
29 | Identifying conservation priorities in a defaunated tropical biodiversity hotspot | 衰退した熱帯の生物多様性ホットスポットにおける保全の優先順位の特定 | Tilker et al. |
30 | Novel universal primers for metabarcoding environmental DNA surveys of marine mammals and other marine vertebrates | 海洋哺乳類およびその他の海洋脊椎動物の環境DNAメタバーコーディング調査のための新規ユニバーサルプライマーの開発 | Valsecchi et al. |
32 | Analysis of a coastal North Sea fish community: Comparison of aquatic environmental DNA concentrations to fish catches | 北海沿岸の魚類群集の解析 : 水生環境DNA濃度と漁獲量の比較 | van Bleijswijk et al. |
33 | Testing multiple substrates for terrestrial biodiversity monitoring using environmental DNA (eDNA) metabarcoding | 環境DNA(eDNA)メタバーコーディングを用いた陸域生物多様性モニタリングのための複数の基盤的なテスト | Van der Heyde |
34 | Holistic pelagic biodiversity monitoring of the Black Sea via eDNA metabarcoding approach: From bacteria to marine mammals | 環境DNAメタバーコーディングアプローチによる黒海の遠洋生物多様性モニタリング : バクテリアから海洋哺乳類まで | Zhang et al. |
35 | Environmental DNA detection of Arctic char (Salvelinus alpinus) in Irish lakes: Development and application of a species-specific molecular assay | アイルランドの湖沼における北極イワナ(Salvelinus alpinus)の環境DNA検出 : 種特異的分子分析法の開発と応用 | Mirinmin et al. |
36 | Moving eDNA surveys onto land: Strategies for active eDNA aggregation to detect invasive forest insects | 環境DNA調査を陸上 : 侵略的な森林昆虫を検出するための能動的な環境DNAアグリゲーションの戦略 | Valentin et al. |
37 | DNA and eDNA-based tracking of the North African sharptooth catfish Clarias gariepinus | 北アフリカのsharptooth catfish(Clarias gariepinus)のDNAとeDNAに基づく追跡 | Elberri et al. |
38 | Advances and prospects of environmental DNA in neotropical rainforests | 新熱帯雨林における環境DNAの進歩と展望 | Zinger et al. |
39 | Environmental DNA sampling informs fish eradication efforts: case studies and lessons learned | 環境DNAサンプリングが魚類の根絶に役立つ:事例研究と教訓 | Carim et al. |
40 | Simple, sensitive and species-specific assays for detecting quagga and zebra mussels (Dreissena rostriformis bugensis and D. polymorpha) using environmental DNA | 環境DNAを用いたquaggaおよびzebra mussels(Dreissena rostriformis bugensisおよびD. polymorpha)の検出のための単純かつ高感度で種特異的な分析法 | Blackman et al. |
41 | Standards for Methods Utilizing Environmental DNA for Detection of Fish Species | 魚類の種の検出に環境DNAを利用した方法の基準 | Shu et al. |
42 | Environmental DNA (eDNA) detection of marine aquatic invasive species (AIS) in Eastern Canada using a targeted species-specific qPCR approach | 標的化された種特異的qPCR法を用いたカナダ東部の海洋水生侵略種(AIS)の環境DNA(eDNA)検出 | LeBlanc et al. |
43 | Reliable eDNA detection and quantification of the European weather loach (Misgurnus fossilis) | Msgurnus fossilisの信頼性の高い環境DNA検出と定量化 | Brys et al. |
44 | Genetic tools in the management of invasive mammals: recent trends and future perspectives | 侵略的哺乳類の管理における遺伝子ツール:最近の傾向と将来の展望 | Browett et al. |
45 | A muddy time capsule: using sediment environmental DNA for the long-term monitoring of coastal vegetated ecosystems | 泥だらけのタイムカプセル:沿岸植生生態系の長期モニタリングのための堆積物環境DNAの利用 | Forster et al. |
46 | Revising the range of Rocky Mountain tailed frog, Ascaphus montanus, in British Columbia, Canada, using environmental DNA methods | 環境DNA法を用いたカナダ・ブリティッシュコロンビア州のAscaphus montanusの生息域の見直し | Hobbs et al. |
47 | Validating metabarcoding-based biodiversity assessments with multi-species occupancy models: A case study using coastal marine eDNA | 多種占有モデルを用いたメタバーコーディングに基づく生物多様性評価の検証 沿岸海域の海洋環境DNAを用いたケーススタディ | McClenaghan et al. |
48 | Validating environmental DNA metabarcoding for marine fishes in diverse ecosystems using a public aquarium | 水族館を利用した多様な生態系における海洋魚類の環境DNAメタバーコーディングの検証 | Morey et al. |
49 | Detection of lamprey in Southernmost South America by environmental DNA (eDNA) and molecular evidence for a new species | 環境DNAによる南米最南端のヤツメの検出と新種の分子的証拠 | Nardi et al. |
50 | Are bacteria potential sources of fish environmental DNA? | バクテリアは魚の環境DNAの潜在的な供給源になるのか? | Nukazawa et al. |
51 | Fishing for mammals: Landscape-level monitoring of terrestrial and semi-aquatic communities using eDNA from riverine systems | 哺乳類を釣る: 河川系の環境DNAを用いた陸生・半水生生物群集の景観レベルでのモニタリング | Sales et al. |
52 | Parallel, targeted analysis of environmental samples via highthroughput quantitative PCR | ハイスループット定量PCRによる環境試料のパラレル・ターゲット解析 | Wilcox et al. |
53 | Environmental DNA and Specific Primers for Detecting the Invasive Species Ectopleura crocea (Hydrozoa: Anthoathecata) in Seawater Samples | 海水試料中の外来種Ectopleura crocea (Hydrozoa: Anthoathecata)を検出するための環境DNAと特異的プライマーの開発 | Kim et al. |
54 | Detecting Native Freshwater Fishes Using Novel Non-invasive Methods | 新しい非侵襲的手法を用いた在来淡水魚の検出] | Castaneda et al. |
55 | The effect of temperature on environmental DNA degradation of Japanese eel | ニホンウナギの環境DNAの分解に及ぼす温度の影響 | Kasai et al. |
56 | Enhancing tropical conservation and ecology research with aquatic environmental DNA methods: an introduction for non-environmental DNA specialists | 水生環境DNA法による熱帯保全・生態学研究の強化:非環境DNA専門家のための入門書 | Huerlimann et al. |
57 | Organic matter reduces the amount of detectable environmental DNA in freshwater | 有機物は淡水中の検出可能な環境DNA量を減少させる | Bochove et al. |
58 | Effects of sampling seasons and locations on fish environmental DNA metabarcoding in dam reservoirs | ダム貯水池における魚類環境DNAメタバーコーデングに及ぼすサンプリング季節性と場所の影響 | Hayami et al. |
59 | Chapter Ten – Informing marine spatial planning decisions with environmental DNA | 第10章 環境DNAを用いた海洋空間計画の意思決定の情報化 | Bani et al. |
60 | Validation of an environmental DNA protocol to detect a stream‐breeding amphibian, the Streamside Salamander (Ambystoma barbouri) | 流域で繁殖する両生類であるStreamside Salamander(Ambystoma barbouri)を検出するための環境DNAプロトコルの検証 | Witzel et al. |
61 | Detecting invertebrate ecosystem service providers in orchards: traditional methods versus barcoding of environmental DNA in soil | 果樹園における無脊椎動物の生態系サービス提供者の検出:従来の方法と土壌中の環境DNAのバーコーディングの比較 | Todd et al. |
62 | Qualitative and quantitative detection using eDNA technology: A case study of Fenneropenaeus chinensis in the Bohai Sea | eDNA技術を用いた定性・定量的検出 : Bohai海域におけるコウライエビのの事例研究 | Li et al. |
63 | Dead or alive: sediment DNA archives as tools for tracking aquatic evolution and adaptation | 生か死か:水生生物の進化と適応を追跡するためのツールとしての堆積物DNAアーカイブ | Ellegaard |
64 | Analysis of sea lamprey environmental DNA during lampricide treatment in a tributary of Lake Ontario | オンタリオ湖の支流におけるlampricede処理中のウミヤツメ環境DNA分析 | Kaitlyn et al. |
65 | Detection of the Amphibian Pathogens Chytrid Fungus (Batrachochytrium dendrobatidis) and Ranavirus in West Texas, USA, Using Environmental DNA | 環境DNAを用いた米国西テキサス州における両生類病原体のChytrid Fungus(Batrachochytrium dendrobatidis)とRanavirusの検出 | Barnes et al. |
66 | Supervised machine learning is superior to indicator value inference in monitoring the environmental impacts of salmon aquaculture using eDNA metabarcodes | 教師付き機械学習は環境DNAメタバーコーディングを用いたサケの繁殖環境モニタリング時の指標値推論において優れている | Frühe et al. |
67 | Identifying error and accurately interpreting eDNA metabarcoding results: A case study to detect vertebrates at arid zone waterholes | 誤差の特定とeDNAメタバーコーディング結果の正確な解釈 : 乾燥地帯の水飲み場における脊椎動物検出のためのケーススタディ | Furlan et al. |
68 | Environmental DNA analysis shows high potential as a tool for estimating intraspecific genetic diversity in a wild fish population | 環境DNA分析は野外魚類個体群の種内遺伝的多様性を推定するツールとして高い可能性を示す | Tsuji et al. |
69 | Estimations of Riverine Distribution, Abundance, and Biomass of Anguillid Eels in Japan and Taiwan Using Environmental DNA Analysis | 環境DNA解析を用いた日本と台湾におけるAnguillid Eelsの河川分布・量・バイオマスの推定 | Itakura et al. |
70 | Environmental DNA metabarcoding for freshwater bivalves biodiversity assessment: methods and results for the Western Palearctic (European sub-region) | 淡水二枚貝の生物多様性評価のための環境DNAメタバーコーディング : 西南極海(ヨーロッパ亜地域) の方法と結果 | Prié et al. |
71 | Monitoring the silver carp invasion in Africa: a case study using environmental DNA (eDNA) in dangerous watersheds | アフリカにおけるSilver carpの侵入監視:危険な流域における環境DNA(eDNA)を用いた事例研究 | Crookes et al. |
72 | Using environmental DNA to detect estuarine crocodiles, a cryptic-ambush predator of humans | 環境DNAを用いた人を捕食するワニを河口域から検出する | Rose et al. |
73 | Using environmental DNA to monitor the spatial distribution of the California Tiger Salamander Ambystoma californiense | 環境DNAを用いたCalifornia Tiger Salamander(Ambystoma californiense)の空間分布のモニタリング | Kieran et al. |
74 | A drop in the ocean: Monitoring fish communities in spawning areas using environmental DNA | 海中の中の一滴 : 環境DNAを用いた産卵地域の魚類群集モニタリング | Ratcliffe et al. |
75 | Are Environmental DNA Methods Ready for Aquatic Invasive Species Management? | 環境DNA法は水生外来種管理のための準備ができているか? | Sepulveda et al. |
76 | eDNA and metabarcoding for rewilding projects monitoring, a dietary approach | 再野生化プロジェクトのモニタリングのための環境DNAとメタバーコーディング、食事的アプローチ | Lacolina et al. |
77 | Improved Environmental DNA Reference Library Detects Overlooked Marine Fishes in New Jersey, United States | 改良された環境DNAリファレンスライブラリーは米国ニュージャージー州の見落とされた海洋魚類を検出する | Stoeckle et al. |
78 | Caged fish experiment and hydrodynamic bidimensional modeling highlight the importance to consider 2D dispersion in fluvial environmental DNA studies | ケージ内の魚類を使った実験と流体力学的2次元モデリングは河川環境DNAにおける2次元分散を考慮することの重要性を強調する | Laporte et al. |
79 | Molecular and morphological signatures for extreme environmental adaptability of the invasive mussel Brachidontes pharaonis | 侵略的な貝(Brachidontes pharaonis)の極端な環境適応性に関する分子学的・形態学的特徴 | Mohammed-Geba et al. |
80 | Monitoring freshwater fish communities in large rivers using environmental DNA (eDNA) metabarcoding and a long‐term electrofishing survey | 環境DNA(eDNA)メタバーコーディングと長期の電気漁法を用いた大河川における魚類群集のモニタリング | Goutte et al. |
81 | Environmental DNA can act as a biodiversity barometer of anthropogenic pressures in coastal ecosystems | 環境DNAは沿岸生態系における人為的な圧力の生物多様性のバロメーターとして機能する | DiBattista et al. |
82 | Macroinvertebrate community diversity and habitat quality relationships along a large river from targeted eDNA metabarcode assays | 標準的な環境DNAメタバーコーディング評価に基づく大河川の大型脊椎動物群集の多様性と生息地の質の関係 | Marshall et al. |
83 | A comparison of European eel Anguilla anguilla eDNA concentrations to fyke net catches in five Irish lakes | アイルランドの5つの湖におけるネット漁法とヨーロッパウナギ(Anguilla anguilla)の環境DNA濃度の比較 | Weldon et al. |
84 | Quantitative evaluation of intraspecific genetic diversity in a natural fish population using environmental DNA analysis | 環境DNA分析による天然魚類個体群の種内遺伝的多様性の定量的な評価 | Tsuji et al. |
85 | Optimizing an eDNA protocol for estuarine environments: Balancing sensitivity, cost and time | 河口域環境での環境DNAプロトコルの最適化: 感度、コスト、時間のバランス | Sanches et al. |
86 | eDNA‐based monitoring: Advancement in management and conservation of critically endangered killifish species | 環境DNAによるモニタリング: 絶滅危機のメダカの管理と保全の進展 | Mauvisseau et al. |
87 | Identifying Under‐Ice Overwintering Locations of Juvenile Chinook Salmon by Using Environmental DNA | 環境DNAを用いたChinookサーモンの幼魚の氷下の越冬場所の特定 | Khalsa et al. |
88 | 60 specific eDNA qPCR assays to detect invasive, threatened, and exploited freshwater vertebrates and invertebrates in Eastern Canada | カナダ東部で侵略され、絶滅の危機に晒され、悪用されている淡水の脊椎動物・無脊椎動物を検出するための60の特異的な環境DNAqPCR評価法 | Hernandez et al. |
89 | Environmental DNA reveals cryptic diversity within the subterranean amphipod genus Pseudocrangonyx Akatsuka & Komai, 1922 (Amphipoda: Crangonyctoidea: Pseudocrangonyctidae) from central Japan | 環境DNAから明らかになった地中の端脚類の多様性(Pseudocrangonyx Akatsuka & Komai, 1922)の多様性 | Yonezawa et al. |
90 | Comparing diversity levels in environmental samples: DNA sequence capture and metabarcoding approaches using 18S and COI genes | 環境試料における生物多様性レベルの比較: 18sとCOI領域を用いたDNA配列の捕捉とメタバーコーディングによるアプローチ | Langen et al. |
91 | Review and application of environmental DNA (eDNA) investigation of terrestrial species in urban ecosystem | 都市生態系における陸棲種の環境DNA(eDNA)調査の検討と応用 | Kim et al. |
92 | Environmental DNA: A promising factor for tuberculosis risk assessment in multi-host settings | 環境DNA: 複数の宿主環境における結核リスク評価のための有望な要因 | Martínez-Guijosa et al. |
93 | Application of eDNA as a tool for assessing fish population abundance | 魚類個体群の豊富さを評価するためのツールとしての環境DNAの応用 | Spear et al. |
94 | Two Ocean Pass: An Alternative Hypothesis for the Invasion of Yellowstone Lake by Lake Trout, and Implications for Future Invasions | Two Ocean Pass: イエローストーン湖におけるレイクトラウトの侵入に関する代替仮説と将来の侵入への示唆 | Koel et al. |
95 | Detection of herbivory: eDNA detection from feeding marks on leaves | 草食の検出:葉の摂食痕からのeDNA検出 | Aoi et al. |
96 | No evidence that crayfish carcasses produce detectable environmental DNA (eDNA) in a stream enclosure experiment | ザリガニの死骸が検出可能な環境DNA(eDNA)を生成するという証拠はない | Curtis et al. |
97 | Aquatic insect community structure revealed by eDNA metabarcoding derives indices for environmental assessment | 環境DNAメタバーコーディングにより明らかになった水生昆虫群集構造は環境評価の指標となる | Uchida et al. |
98 | Leveraging eDNA to expand the study of hybrid zones | ハイブリッドゾーンの研究を拡大するための環境DNAの活用 | Stewart et al. |
99 | Modeling the ecological status response of rivers to multiple stressors using machine learning: A comparison of environmental DNA metabarcoding and morphological data | 機械学習を用いた複数のストレス要因に対する河川の生態状態応答のモデル化: 環境DNAメタバーコーディングと形態学的データの比較 | Fan et al. |
100 | Pathway to Increase Standards and Competency of eDNA Surveys (PISCeS)—Advancing collaboration and standardization efforts in the field of eDNA | 環境DNA調査の標準化・能力向上のための道筋(PISCeS)-環境DNA分野における標準化・共同研究の推進 | Loeza-Quintana et al. |
101 | Simultaneous detection of native and invasive crayfish and Aphanomyces astaci from environmental DNA samples in a wide range of habitats in Central Europe | 中央ヨーロッパの広範な生息地における環境DNAサンプルからの在来ザリガニと侵入ザリガニおよびAphanomyces astaciの同時検出 | Rusch et al. |
102 | Development and evaluation of fish eDNA metabarcoding assays facilitate the detection of cryptic seahorse taxa (family: Syngnathidae) | 魚類の環境DNAメタバーコーデングの評価法はタツノオトシゴ属の検出を容易にする | Nester et al. |
103 | Estimating fish population abundance by integrating quantitative data on environmental DNA and hydrodynamic modeling | 環境DNAの定量データと流体モデルの統合による魚類個体数の推定 | Fukaya et al. |
104 | Can environmental DNA be used to detect first arrivals of the cane toad, Rhinella marina , into novel locations? | 環境DNAを用いてオオヒキガエル(Rhinella marina)の新生息地への到達を検出可能か? | Villacorta-Rath et al. |
105 | Droplet digital PCR applied to environmental DNA, a promising method to estimate fish population abundance from humic‐rich aquatic ecosystems | フミン酸リッチな水棲生態系における環境DNAとデジタルPCRを用いた魚類の個体数推定法の開発 | Capo et al. |
106 | Executing multi-taxa eDNA ecological assessment via traditional metrics and interactive networks | 従来のメトリクスと対話型ネットワークを用いた複数分類群の環境DNAによる生態学的評価の実行 | Seymour et al. |
107 | Use of Environmental DNA to Determine Fantail Darter (Etheostoma flabellare) Density in a Laboratory Setting: Effects of Biomass and Filtration Method | 実験室環境におけるFantail Darter(Etheostoma flabellare)の密度を決定するための環境DNAの利用: バイオマスとろ過方法の効果 | Guivas et al. |
108 | Exploration of Environmental DNA (eDNA) to Detect Kirtland’s Snake (Clonophis kirtlandii) | Kirhland’s Snake(Clonophis kirtlandii)を検出するための環境DNAの探索 | Ratsch et al. |
109 | Environmental DNA from plastic and textile marine litter detects exotic and nuisance species nearby ports | 港付近に生息する外来種と有害種をプラスチックや繊維質の海洋ごみ由来の環境DNAから検出する | Ibabe et al. |
110 | Capture of Environmental DNA (eDNA) from Water Samples by Flocculation. | 凝集による水試料からの環境DNAの捕集 | Schill et al. |
111 | Characterizing the spatial and temporal occurrence patterns of the endangered botiid loach Parabotia curtus by environmental DNA analysis using a newly developed species-specific primer set | 新規開発の種特異的プライマーセットを用いた環境DNA解析による絶滅の危機に瀕するドジョウ(Parabotia curtus)の空間的・時間的発生パターン解析 | Sugiura et al. |
112 | Accumulation curves of environmental DNA sequences predict coastal fish diversity in the coral triangle | 環境DNA配列の累積曲線はサンゴデルタ地帯の沿岸魚類相の多様性を予測する | Juhel et al. |
113 | The relationship between eDNA particle concentration and organism abundance in nature is strengthened by allometric scaling | 自然環境中の環境DNAの粒子密度とサイズと生物の豊富さの関係は非比例的スケーリングによって補強される | Yates et al. |
114 | Use of environmental DNA to detect the invasive aquatic plants Myriophyllum spicatum and Egeria densa in lakes | 環境DNAを用いた湖沼における侵略的水生植物 Myriophyllum spicatumとEgeria densaの検出 | Kuehne et al. |
115 | Comparing environmental metabarcoding and trawling survey of demersal fish communities in the Gulf of St. Lawrence, Canada | カナダ・セントローレンス湾における環境メタバーコーディングと底生魚群集のトロール調査の比較 | Afzali et al. |
116 | Environmental DNA allows upscaling spatial patterns of biodiversity in freshwater ecosystems | 淡水生態系における生物多様性の空間パターンの拡大を可能にする環境DNA | Carraro et al. |
117 | Environmental DNA detection tracks established seasonal occurrence of blacktip sharks (Carcharhinus limbatus) in a semi-enclosed subtropical bay | 半閉鎖的亜熱帯性の湾におけるBlacktip sharks(Carcharhinus limbatus)の季節的な発生を追跡する環境DNA検出法の開発 | Postaire et al. |
118 | Pooled samples and eDNA-based detection can facilitate the “clean trade” of aquatic animals | 集められたサンプルとeDNAベースの検出は、水生動物の「クリーンな取引」を促進する | Brunner |
119 | Design and Validation of Passive Environmental DNA Samplers (PEDS) using Granular Activated Carbon (GAC) and Montmorillonite Clay (MC) | 粒状活性炭(GAC)とモンモリロナイト粘土(MC)を用いた受動的環境DNAサンプラー(PEDS)の設計と検証 | Kirtane et al. |
120 | Assessment of fish biodiversity in four Korean rivers using environmental DNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングを用いた韓国4河川における魚類の生物多様性の評価 | Alam et al. |
121 | An Optional Low-Cost Method of Extracting Environmental DNA of Macro-Organisms from Filter Membranes in Large Scale eDNA Surveys | 大規模な環境DNA調査におけるメンブレンフィルターからの大型生物に由来する環境DNAの低コストな抽出法の検討 | Chen et al. |
122 | Field storage of water samples affects measured environmental DNA concentration and detection | 野外での水サンプルの保管は環境DNAの濃度と検出に影響を及ぼす | Curtis et al. |
123 | Piloting an integrated approach for estimation of environmental risk of Schistosoma haematobium infections in pre-school-aged children and their mothers at Barombi Kotto, Cameroon | Piloting an integrated approach for estimation of environmental risk of Schistosoma haematobium infections in pre-school-aged children and their mothers at Barombi Kotto, Cameroon | Eyre et al. |
124 | Metabarcoding unsorted kick‐samples facilitates macroinvertebrate‐based biomonitoring with increased taxonomic resolution, while outperforming environmental DNA | キックサンプルのメタバーコーディングは環境DNAより優れており、分類学的分解能の向上と大型無脊椎動物のモニタリングを可能とする | Pereira‐da‐Conceicoa et al. |
125 | Development of an environmental DNA metabarcoding assay for aquatic vascular plant communities | 水棲の維管束植物群集の環境DNAメタバーコーディング法の開発 | Coghlan et al. |
126 | Understanding leptospirosis eco-epidemiology by environmental DNA metabarcoding of irrigation water from two agro-ecological regions of Sri Lanka | スリランカの2つの農業生態学的地域の灌漑用水の環境DNAメタバーコーディングによるレプトスピラ症の生態疫学的な理解 | Gamage et al. |
127 | New barcoding primers for the efficient monitoring of diplonemid diversity | ミドリムシ門の多様性を効率的にモニタリングするための新たなバーコーディングプライマー | Yabuki et al. |
128 | Detection of the parasitic nematode, Pseudocapillaria tomentosa, in zebrafish tissues and environmental DNA in research aquaria | ゼブラフィッシュ組織中の寄生線虫(Pseudocapillaria tomentosa)の検出と研究用水槽の環境DNAの検出 | Norris et al. |
129 | Methods to maximize environmental DNA (eDNA) for detection the presence of Alligator Gar (Atractosteus spatula) | アリゲーターガー(Atractosteus spatula)の生息を検出するための環境DNAの能力を最大化する方法 | Nur et al. |
130 | Development and application of eDNA-based tools for the conservation of white-clawed crayfish | white-clawed crayfishの保護のための環境DNAに基づくツールの開発と応用 | Troth et al. |
131 | Calibrating Environmental DNA Metabarcoding to Conventional Surveys for Measuring Fish Species Richness | 魚類の種多様性を測るための環境DNAメタバーコーディングを従来調査に適用する | McElroy et al. |
132 | Blind assessment of vertebrate taxonomic diversity across spatial scales by clustering environmental DNA metabarcoding sequences | 環境DNAメタバーコーディング配列のクラスタリングによる脊椎動物分類学的多様性の空間スケールでのブラインド評価 | Marques et al. |
133 | Marine water environmental DNA metabarcoding provides a comprehensive fish diversity assessment and reveals spatial patterns in a large oceanic area | 海洋水に由来する環境DNAのメタバーコーディングは、魚類の多様性を包括的に評価し、大洋域の空間パターンを明らかにする | Fraija-Fernández et al. |
134 | Accounting for false positive detections in occupancy studies based on environmental DNA: A case study of a threatened freshwater fish (Galaxiella pusilla) | 環境DNAに基づく占有調査における誤検出の説明: 絶滅の危機に瀕する淡水魚(Galaxiella pusilla)の事例研究 | Tingley et al. |
135 | Pitfalls during in silico prediction of primer specificity for eDNA surveillance | 環境DNAの調査のためのプライマー特異性のIn silicoにおける予測の落とし穴 | So et all. |
136 | Remote, autonomous real-time monitoring of environmental DNA from commercial fish | 一般的な魚類の環境DNAの遠隔・自律式リアルタイムモニタリング | Hansen et al. |
137 | An illustrated manual for environmental DNA research: Water sampling guidelines and experimental protocols | 環境DNA研究のための図解マニュアル: 採水ガイドラインと実験プロトコル | Minamoto et al. |
138 | Assessment of stream macroinvertebrate communities with eDNA is not congruent with tissue‐based metabarcoding | 環境DNAを用いた河川の大型脊椎動物群集の評価は組織ベースのメタバーコーディングとは一致しない | Gleason et al. |
139 | Lost and found: Frogs in a biodiversity hotspot rediscovered with environmental DNA | 失われたものと発見されたもの。生物多様性ホットスポットのカエルを環境DNAで再発見 | Lopes et al. |
140 | Honey as a Source of Environmental DNA for the Detection and Monitoring of Honey Bee Pathogens and Parasites | ミツバチの病原体や寄生虫の検出とモニタリングのための環境DNAの供給源としての蜂蜜 | Ribani et al. |
141 | Species detection from aquatic eDNA: Assessing the importance of capture methods | 水環境に由来する環境DNAから種の検出: 捕獲法の重要性を評価する | Peixoto et al. |
142 | BarcodingGO: A problem‐based approach to teach concepts related to environmental‐DNA and bioinformatics | BarcodingGO: 環境DNAおよびバイオインフォマティクスに関連する概念を教えるための問題提起型のアプローチ | Nunes et al. |
143 | Projection range of eDNA analysis in marshes: a suggestion from the Siberian salamander (Salamandrella keyserlingii) inhabiting the Kushiro marsh, Japan | 湿地帯における環境DNA分析の影響範囲: 釧路湿原に生息するシベリアサンショウウオ(Salamandrella keyserlingii)による示唆 | Takeshita et al. |
144 | Application of environmental DNA methods for the detection and abundance estimation of invasive aquatic plant Egeria densa in lotic habitats | 侵襲性水生植物(Egeria densa)の検出と生息数推定のための環境DNA法の適用 | Miyazono et al. |
145 | Status of the major aquaculture carps of China in the Laurentian Great Lakes Basin | Chapman et al. | |
146 | Designing environmental DNA surveys in complex aquatic systems: Backpack sampling for rare amphibians in Sierra Nevada meadows | 複雑な水生システムにおける環境DNA調査の設計: シエラネバダの牧草地における希少両生類のバックパックサンプリング | Pope et al. |
147 | Environmental DNA metabarcoding for biodiversity monitoring of a highly diverse tropical fish community in a coral reef lagoon: Estimation of species richness and detection of habitat segregation | サンゴ礁のラグーンにおける多様性の高い熱帯魚群集の生物多様性モニタリングのための環境DNAメタバーコーディング: 種多様性の推定と生息環境の分離の検出 | Oka et al. |
148 | Fine-scale environmental heterogeneity shapes fluvial fish communities as revealed by eDNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングによる河川魚類群集の微細な環境不均一性の解明 | Berger et al. |
149 | Environmental DNA metabarcoding provides enhanced detection of the European eel Anguilla anguilla and fish community structure in pumped river catchments | 環境DNAメタバーコーディングは揚水河川集水域におけるヨーロッパウナギ(Anguilla anguilla)と魚類群集構造の検出を提供する | Griffiths et al. |
150 | Technological advances in biodiversity monitoring: applicability, opportunities and challenges | 生物多様性モニタリングの技術的進歩:適用可能性、機会と課題 | Stephenson |
151 | Aquatic suspended particulate matter as source of eDNA for fish metabarcoding | 魚類のメタバーコーディングのための環境DNAの供給源としての水生浮遊粒子状物質 | Diaz et al. |
152 | Robotic environmental DNA bio-surveillance of freshwater health | 淡水の健康状態のロボテックな環境DNAバイオサーベイランス | Sepulveda et al. |
153 | Environmental DNA is effective in detecting the federally threatened Louisiana Pinesnake (Pituophis ruthveni) | 環境DNAは連邦の脅威にさらされているルイジアナ・パインズネーク (Pituophis ruthveni) の検出に効果的である | Katz et al. |
154 | Sensitive environmental DNA detection via lateral flow assay (dipstick)—A case study on corallivorous crown‐of‐thorns sea star (Acanthaster cf. solaris) detection | ラテラルフローアッセイ(ディップスティック)による高感度環境DNA検出(Acanthaster cf. solaris)の事例研究 | Doytle and Uthicke |
155 | Thermal stratification and fish thermal preference explain vertical eDNA distributions in lakes | 熱成層化と魚類の温度選好性が湖沼における垂直方向の環境DNAの分布を明らかにする | Littlefair et al. |
156 | Space-time dynamics in monitoring neotropical fish communities using eDNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングを用いた熱帯魚類群集モニタリングにおける時空間的な変動 | Sales et al. |
157 | Environmental DNA metabarcoding reveals the presence of a small, quick-moving, nocturnal water shrew in a forest stream | 環境 DNA メタバーコーディングにより明らかになった小型で素早い夜行性哺乳類カワネズミの渓流における生息 | Yonezawa et al. |
158 | Evaluating environmental DNA as a tool for detecting an amphibian pathogen using an optimized extraction method | 最適抽出法を用いた両生類病原体検出ツールとしての環境DNAの評価 | Brannely et al. |
159 | Environmental DNA analysis provides an overview of distribution patterns of two dojo loach species within the Naka-ikemi Wetland, Fukui Prefecture, Japan | 環境DNA解析により、福井県中池見湿地内の2種のドジョウの分布パターンの概要が明らかになった | Okada et al. |
160 | New eDNA based tool applied to the specific detection and monitoring of the endangered European eel | 絶滅の危機に瀕しているヨーロッパウナギの特異的な検出とモニタリングに適用される新しい環境DNAベースのツール | Cardas et al. |
161 | MiFish metabarcoding: a high-throughput approach for simultaneous detection of multiple fish species from environmental DNA and other samples | MiFishメタバーコーディング:環境DNAおよびその他のサンプルから複数の魚種を同時に検出するためのハイスループットなアプローチ | Miya et al. |
162 | A comprehensive and comparative evaluation of primers for metabarcoding eDNA from fish | 魚類の環境DNAメタバーコーディングのためのプライマーの包括的・比較評価 | Zhang et al. |
163 | How to design optimal eDNA sampling strategies for biomonitoring in river networks | 河川ネットワークにおけるバイオモニタリングのための最適な環境DNAサンプリング戦略の設計方法 | Carraro et al. |
164 | Environmental DNA is an effective tool to track recolonizing migratory fish following large‐scale dam removal | 環境DNAは大規模なダムの撤去後に回遊魚を追跡するための有効なツールである | Duda et al. |
165 | Using environmental DNA for biomonitoring of freshwater fish communities: Comparison with established gillnet surveys in a boreal hydroelectric impoundment | 淡水魚群集のバイオモニタリングに環境DNAを利用: 北極海の水力発電貯水池における確立された刺し網調査との比較 | Boivin-Delisle et al. |
166 | Application of eDNA metabarcoding in a fragmented lowland river: Spatial and methodological comparison of fish species composition | 分断された低地河川における環境DNAメタバーコーディングの応用: 魚種組成の空間的・方法論的比較 | Antognazza et al. |
167 | Development and validation of four environmental DNA assays for species of conservation concern in the South-Central United States | 米国中南部における保全が懸念される種のための4つの環境DNAアッセイの開発と検証 | Siler et al. |
168 | Comparison of markers for the monitoring of freshwater benthic biodiversity through DNA metabarcoding | DNAメタバーコーディングによる淡水底生生物の生物多様性モニタリングのためのマーカーの比較 | Ficetola et al. |
169 | Multi‐species models reveal that eDNA metabarcoding is more sensitive than backpack electrofishing for conducting fish surveys in freshwater streams | 多種モデルを用いた環境DNAメタバーコーディングは電気漁法よりも淡水域の魚類調査の感度が高いことを解明 | McColl-Gausden et al. |
170 | Environmental (e)DNA: what’s behind the term? Clarifying the terminology and recommendations for its future use in biomonitoring | 環境(e)DNA:用語の背景にあるものとは?用語の明確化と今後のバイオモニタリングでの使用のための推奨事項 | Pawlowski et al. |
171 | Marine biomonitoring with eDNA: can metabarcoding of water samples cut it as a tool for surveying benthic communities? | 環境DNAを用いた海洋バイオモニタリング: 水試料のメタバーコーディングは底生生物群集の調査ツールとして利用できるか? | Antich et al. |
172 | Increasing confidence for discerning species and population compositions from metabarcoding assays of environmental samples: case studies of fishes in the Laurentian Great Lakes and Wabash River | 環境試料のメタバーコーディングアッセイから種と個体群組成を識別するための信頼性の向上:ローレンシャン五大湖とワバッシュ川の魚類の事例研究 | Snyer et al. |
173 | Certain detection of uncertain taxa: eDNA detection of a cryptic mountain sucker (Pantosteus jordani) in the Upper Missouri River, USA | 正確な検出による不明な分類群の検出: アメリカ ミズーリ川上流に生息する Pantosteus jordaniの環境DNAの検出 | Mason et al. |
174 | Integrating species distribution and occupancy modeling to study hellbender (Cryptobranchus alleganiensis) occurrence based on eDNA surveys | 環境DNA調査に基づいたヘルベンダー(Cryptobranchus alleganiensis)の生息調査のための種の分布と占有モデルの統合 | Da silva Neto et al. |
175 | Disease in Central Valley Salmon: Status and Lessons from Other Systems | セントラルバレーにおけるサケの病気: 他のシステムの現状と教訓 | Lehman et al. |
176 | A non-lethal method for detection of Bonamia ostreae in flat oyster (Ostrea edulis) using environmental DNA | 環境DNAによるカキOstrea edulisの寄生虫Bonamia ostreaeの非致死的な検出法 | Jorgensen et al. |
177 | Application of Environmental DNA for Monitoring of Freshwater Fish in Korea | 環境DNAの韓国淡水魚モニタリングへの応用 | Jeong-Hui et al. |
178 | Rapid detection of Galba truncatula in water sources on pasture-land using loop-mediated isothermal amplification for control of trematode infections | LAMP法を用いた吸虫感染症の制御のための放牧地の水源からGalba truncatulaの迅速的な検出 | Davis et al. |
179 | Assessing the impact of the threatened crucian carp (Carassius carassius) on pond invertebrate diversity ‐ a comparison of conventional and molecular tools | 絶滅の危機に瀕しているフナ(Carassius carassius)が池の無脊椎動物の多様性に与える影響の評価-従来のツールと分子ツールの比較 | Harper et al. |
180 | Comparing environmental DNA metabarcoding and underwater visual census to monitor tropical reef fishes | 環境DNAメタバーコーディングと水中目視調査の比較による熱帯サンゴ礁魚類のモニタリング | Fernández et al. |
181 | Environmental DNA shedding and decay rates from diverse animal forms and thermal regimes | 多様な動物の形態と熱環境からの環境DNAの脱落と崩壊速度 | Allan et al. |
182 | Mitochondrial genomes of Danish vertebrate species generated for the national DNA reference database, DNAmark | デンマークの脊椎動物種のミトコンドリアゲノムは、国のDNAリファレンスデータベースであるDNAmarkのために作成された。 | Margaryan et al. |
183 | Sedimentary DNA tracks decadal-centennial changes in fish abundance | 堆積DNAは魚類資源の10年ごとの変化を追跡する | Kuwae et al. |
184 | Evaluation of fish biodiversity in estuaries using environmental DNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングを用いた河口域における魚類の生物多様性の評価 | Ahn et al. |
185 | Comparing fish prey diversity for a critically endangered aquatic mammal in a reserve and the wild using eDNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングを用いた絶滅危惧種の水生哺乳類の餌生物多様性の野生と保護区の比較 | Qu et al. |
186 | Broad-scale detection of environmental DNA for an invasive macrophyte and the relationship between DNA concentration and coverage in rivers | 河川内における侵略的な大型植物の環境DNAの広域的な検出に関するDNA濃度とカバレッジの関係 | Doi et al. |
187 | Population differentiation from environmental DNA: Investigating the potential of haplotype presence/absence‐based analysis of molecular variance | 環境DNAからの集団分化:ハプロタイプの有無に基づく分子分散解析の可能性を探る | Azarian et al. |
188 | Using environmental DNA and occupancy modeling to estimate rangewide metapopulation dynamics | 環境DNAと占有モデルを用いた広域的なメタ個体群動態の推定 | Martel et al. |
189 | Benthic monitoring of oil and gas offshore platforms in the North Sea using environmental DNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングを用いた北海石油・ガス洋上プラットフォームの底生モニタリング | Mauffrey et al. |
190 | Exploring a legendary giant squid: an environmental DNA approach | 環境DNAによるダイオウイカの探索 | Doi et al. |
191 | Environmental DNA Monitoring: Better Tracking of Endangered, Rare, Cryptic, and Invasive Species | 環境DNAモニタリング: 絶滅の危機に瀕している種、希少種、隠ぺい種、侵略種のよりよい追跡法 | Ota et al. |
192 | Fish and crustacean biodiversity in an outer maritime estuary of the Pearl River Delta revealed by environmental DNA | 環境DNAによる珠江デルタ外洋河口域における魚類・甲殻類の生物多様性の解明 | Cheang et al. |
193 | Identifying spawning events in fish by observing a spike in environmental DNA concentration after spawning | 産卵後の環境DNA濃度の急上昇を観察することで、魚の産卵イベントを特定する | Tsuji et al. |
194 | Allometric scaling of eDNA production in stream‐dwelling brook trout (Salvelinus fontinalis) inferred from population size structure | 母集団サイズ構造から推定される渓流域に生息するカワマス(Salvelinus fontinalis)における環境DNA産生のアロメトリック・スケーリング | Yates et al. |
195 | Species detection using environmental DNA from water samples | 水サンプルからの環境DNAを用いた生物種の検出 | Ficetola et al. |
196 | From molecules to management: Adopting DNA-based methods for monitoring biological invasions in aquatic environments | 分子から管理へ : 水生環境における生物学的侵入のモニタリングにDNAベースの方法を採用する | Darling and Mahon |
197 | Persistence of Environmental DNA in Freshwater Ecosystems | 淡水生態系における環境DNAの持続性 | Dejean et al. |
198 | Molecular Detection of Vertebrates in Stream Water: A Demonstration Using Rocky Mountain Tailed Frogs and Idaho Giant Salamanders | 渓流水中の脊椎動物の分子検出 : ロッキーマウンテンテイルドフロッグとアイダホオオサンショウウオを用いたデモンストレーション | Goldberg et al. |
199 | “Sight-unseen” detection of rare aquatic species using environmental DNA | 環境DNAを用いた “目には見えない “希少水生種の検出 | Jerde et al. |
200 | Molecular Detection of Invasive Species in Heterogeneous Mixtures Using a Microfluidic Carbon Nanotube Platform | マイクロ流体カーボンナノチューブプラットフォームを用いた不均一混合物中の外来種の分子検出 | Mahon et al. |
201 | Meta-barcoding of ‘dirt’ DNA from soil reflects vertebrate biodiversity | 脊椎動物の生物多様性を反映する土壌の「汚れ」DNAのメタバーコード化 | Andersen et al. |
202 | The use of molecular tools in invasion biology: an emphasis on freshwater ecosystems | 侵入生物学における分子ツールの利用 : 淡水生態系を中心に | Blanchet |
203 | Improved detection of an alien invasive species through environmental DNA barcoding: the example of the American bullfrog Lithobates catesbeianus | 環境DNAバーコーディングによる外来侵入種の検出向上 : Lithobates catesbeianusの例 | Dejean et al. |
204 | Investigating the Potential Use of Environmental DNA (eDNA) for Genetic Monitoring of Marine Mammals | 海洋哺乳類の遺伝的モニタリングにおける環境DNAの利用可能性の調査 | Foote et al. |
205 | Response to Casey et al.’s sensitivity of detecting environmental DNA comment | Caseyらの環境DNA検出感度に関するコメントへの反論 | Jerde et al. |
206 | Conservation in a cup of water: estimating biodiversity and population abundance from environmental DNA | 一杯の水の中の保全 : 環境DNAから生物多様性と個体数を推定する | Lodge et al. |
207 | Surveillance of fish species composition using environmental DNA | 環境DNAを用いた魚種組成の調査 | Minamoto et al. |
208 | An eDNA approach to detect eastern hellbenders (Cryptobranchus a. alleganiensis) using samples of water | 水サンプルを用いた環境DNAアプローチによるCryptobranchus a. alleganiensisの検出 | Olson et al. |
209 | Next-generation sequencing technologies for environmental DNA research | 環境DNA研究のための次世代シーケンス技術 | Shokralla et al. |
210 | Environmental DNA | 環境DNA | Taberlet et al. |
211 | Estimation of Fish Biomass Using Environmental DNA | 環境DNAを用いた魚類バイオマスの推定 | Takahara et al. |
212 | Detection of a Diverse Marine Fish Fauna Using Environmental DNA from Seawater Samples | 海水サンプルの環境DNAを用いた多様な海洋魚類相の検出 | Thomsen et al. |
213 | Monitoring endangered freshwater biodiversity using environmental DNA | 環境DNAを用いた絶滅の危機に瀕する淡水の生物多様性のモニタリング | Thomsen et al. |
214 | The future of environmental DNA in ecology | 生態学における環境DNAの未来 | Yoccoz |
215 | Combining species-specific COI primers with environmental DNA analysis for targeted detection of rare freshwater species | 種特異的COIプライマーと環境DNA分析の組み合わせによる希少淡水種の狙いを絞った検出 | Bronnenhuber and Wilson |
216 | Something in the water: biosecurity monitoring of ornamental fish imports using environmental DNA | 水の中の何か : 環境DNAを用いた観賞魚輸入のバイオセキュリティモニタリング | Collins et al. |
217 | Rapid invasive species detection by combining environmental DNA with Light Transmission Spectroscopy | 環境DNAと光透過分光法の組み合わせによる迅速な侵入種の検出 | Egan et al. |
218 | Environmental DNA as a new method for early detection of New Zealand mudsnails (Potamopyrgus antipodarum) | Potamopyrgus antipodarumの早期発見のための新しい方法としての環境DNA | Goldberg et al. |
219 | Detection of Asian carp DNA as part of a Great Lakes basin-wide surveillance program | 五大湖流域全体の調査・プログラムの一環としてのAsian carp DNAの検出 | Jerde et al. |
220 | Validation of eDNA Surveillance Sensitivity for Detection of Asian Carps in Controlled and Field Experiments | 管理下および野外実験におけるAsian Carp検出のための環境DNA調査法の検出感度の検証 | Mahon et al. |
221 | Estimating occupancy and abundance of stream amphibians using environmental DNA from filtered water samples | ろ過水サンプルの環境DNAを用いた河川両生類の生息数と個体数の推定 | Pilliod et al. |
222 | Noninvasive Method for a Statewide Survey of Eastern Hellbenders Cryptobranchus alleganiensis Using Environmental DNA | 環境DNAを用いた非侵襲的手法によるCryptobranchus alleganiensisの全州調査 | Santas et al. |
223 | Using Environmental DNA to Estimate the Distribution of an Invasive Fish Species in Ponds | 環境DNAを用いた池における外来魚種の分布推定 | Takahara et al. |
224 | Robust Detection of Rare Species Using Environmental DNA: The Importance of Primer Specificity | 環境DNAを用いた希少種の堅牢な検出 : プライマーの特異性の重要性 | Wilcox et al. |
225 | Environmental Conditions Influence eDNA Persistence in Aquatic Systems | 環境条件が水系における環境DNAの持続性に影響を与える | Barnes et al. |
226 | Environmental DNA for wildlife biology and biodiversity monitoring | 野生生物学と生物多様性モニタリングのための環境DNA | Bohmann et al. |
227 | Transport Distance of Invertebrate Environmental DNA in a Natural River | 自然河川における無脊椎動物環境DNAの輸送距離 | Deiner and Altermatt |
228 | History, applications, methodological issues and perspectives for the use of environmental DNA (eDNA) in marine and freshwater environments | 海洋および淡水環境における環境DNA利用の歴史、応用、方法論的問題および展望 | Díaz-Ferguson and Moyer |
229 | Development of molecular markers for eDNA detection of the invasive African jewelfish (Hemichromis letourneuxi): a new tool for monitoring aquatic invasive species in National Wildlife Refuges | 侵略的なHemichromis letourneuxiの環境DNA検出のための分子マーカーの開発 : 国立野生生物保護区における水生侵略種モニタリングのための新しいツール | Díaz-Ferguson et al. |
230 | The Relationship between the Distribution of Common Carp and Their Environmental DNA in a Small Lake | 小湖におけるコイの分布と環境DNAの関係 | Eichmiller et al. |
231 | Replication levels, false presences and the estimation of the presence/absence from eDNA metabarcoding data | 複製レベル・偽存在・環境DNAメタバーコーディングデータからの存在/不在の推定 | Ficetola et al. |
232 | Distance, flow and PCR inhibition: eDNA dynamics in two headwater streams | 距離・流量・PCR阻害 : 2つの源流域における環境DNA動態 | Jane et al. |
233 | Using Environmental DNA to Census Marine Fishes in a Large Mesocosm | 環境DNAを用いた大規模メソコズムにおける海産魚類の調査 | Kelly et al. |
234 | Detection of invasive freshwater fish species using environmental DNA survey | 環境DNA調査による外来淡水魚種の検出 | Keskin |
235 | Utility of environmental DNA for monitoring rare and indicator macroinvertebrate species | 希少および指標となる大型無脊椎動物種のモニタリングにおける環境DNAの有用性 | Mächler et al. |
236 | Meta-genomic surveillance of invasive species in the bait trade | エサ取引における侵入種のメタゲノム監視 | Mahon et al. |
237 | The Release Rate of Environmental DNA from Juvenile and Adult Fish | 幼魚と成魚からの環境DNAの放出率 | Maruyama et al. |
238 | Persistence of DNA in Carcasses, Slime and Avian Feces May Affect Interpretation of Environmental DNA Data | 死骸・スライム・鳥の糞に含まれるDNAの残留性が環境DNAデータの解釈に影響する可能性 | Merkes et al. |
239 | Assessing Environmental DNA Detection in Controlled Lentic Systems | 制御された少流量系における環境DNA検出の評価 | Moyer et al. |
240 | Quantifying Environmental DNA Signals for Aquatic Invasive Species Across Multiple Detection Platforms | 複数の検出プラットフォームにおける水生外来種の環境DNAシグナルの定量化 | Nathan et al. |
241 | The Use of Environmental DNA in Invasive Species Surveillance of the Great Lakes Commercial Bait Trade | 五大湖の商業餌取引における外来種調査における環境DNAの利用 | Nathan et al. |
242 | Detecting an elusive invasive species: a diagnostic PCR to detect Burmese python in Florida waters and an assessment of persistence of environmental DNA | とらえどころのない移入種の検出 : フロリダ水域におけるビルマニシキヘビを検出するための診断PCRと環境DNAの残留性の評価 | Piaggio et al. |
243 | Factors influencing detection of eDNA from a stream-dwelling amphibian | 河川に生息する両生類の環境DNA検出に影響する要因 | Pilliod et al. |
244 | The application of eDNA for monitoring of the Great Crested Newt in the UK | 英国におけるイモリのモニタリングへの環境DNAの応用 | Rees et al. |
245 | The detection of aquatic animal species using environmental DNA – a review of eDNA as a survey tool in ecology | 環境DNAを用いた水生動物種の検出-生態学における調査ツールとしての環境DNAのレビュー | Rees et al. |
246 | Environmental DNA surveillance for invertebrate species: advantages and technical limitations to detect invasive crayfish Procambarus clarkii in freshwater ponds | 無脊椎動物種の環境DNA調査 : 淡水池における移入ザリガニ Procambarus clarkiiを検出するための利点と技術的限界 | Tréguier et al. |
247 | Particle size distribution and optimal capture of aqueous macrobial eDNA | 水系マクロ生物環境DNAの粒子径分布と最適捕捉 | Turner et al. |
248 | Improved Methods for Capture, Extraction, and Quantitative Assay of Environmental DNA from Asian Bigheaded Carp (Hypophthalmichthys spp.) | アジアオオコイ (Hypophthalmichthys spp.) からの環境DNAの捕獲、抽出および定量的アッセイ法の改良 | Turner et al. |
249 | Tracking ghosts: combined electrofishing and environmental DNA surveillance efforts for Asian carps in Ontario waters of Lake Erie | 幽霊の追跡 : オンタリオ州エリー湖水域におけるアジア鯉の電気漁業と環境DNA調査を組み合わせた取り組み | Wilson et al. |
250 | Improving efficiency and reliability of environmental DNA analysis for silver carp | ハクレンを対象とした環境DNA分析の効率化と信頼性の向上 | Amberg et al. |
251 | Environmental DNA evidence of transfer of North Sea molluscs across tropical waters through ballast water | 北海の軟体動物がバラスト水を通じて熱帯海域を移動したことを示す環境DNAの証拠 | Ardura et al. |
252 | eDNA and specific primers for early detection of invasive species–A case study on the bivalve Rangia cuneata, currently spreading in Europe | 侵入種の早期発見のための環境DNAと特異的プライマー : 現在ヨーロッパで広がっている二枚貝Rangia cuneataのケーススタディ | Ardura et al. |
253 | Diverse Applications of Environmental DNA Methods in Parasitology | 寄生虫学における環境DNA法の多様な応用 | Bass et al. |
254 | Using eDNA to develop a national citizen science-based monitoring programme for the great crested newt (Triturus cristatus) | 環境DNAを用いた市民科学に基づくオオイモリ (Triturus cristatus) の全国モニタリングプログラムの開発 | Biggs et al. |
255 | Development and Validation of Environmental DNA (eDNA) Markers for Detection of Freshwater Turtles | 淡水カメの検出のための環境DNAマーカーの開発と検証 | Davy et al. |
256 | Choice of capture and extraction methods affect detection of freshwater biodiversity from environmental DNA | 捕獲と抽出方法の選択が環境DNAからの淡水生物多様性の検出に影響する | Deiner et al. |
257 | Droplet Digital Polymerase Chain Reaction (PCR) Outperforms Real-Time PCR in the Detection of Environmental DNA from an Invasive Fish Species | 液滴デジタルポリメラーゼ連鎖反応 (PCR) が外来魚種からの環境DNA検出においてリアルタイムPCRを上回る | Doi et al. |
258 | Use of Droplet Digital PCR for Estimation of Fish Abundance and Biomass inEnvironmental DNA Surveys | 環境DNA調査における魚類の存在量と生物量の推定へのDroplet Digital PCRの利用 | Doi et al. |
259 | Rapid molecular detection of invasive species in ballast and harbor water by integrating environmental DNA and Light Transmission Spectroscopy | 環境DNAと光透過分光法の統合によるバラスト水および港湾水中の外来種の迅速な分子検出 | Egan et al. |
260 | Mitochondrial Genome Sequencing and Development of Genetic Markers for the Detection of DNA of Invasive Bighead and Silver Carp (Hypophthalmichthys nobilis and H. molitrix) in Environmental Water Samples from the United States | ミトコンドリアゲノムの塩基配列決定と、米国の環境水サンプル中のコクレン(Hypophthalmichthys nobilis)およびハクレン(Hypophthalmichthys molitrix)のDNA検出のための遺伝子マーカーの開発 | Farrington et al. |
261 | A basin-scale application of environmental DNA assessment for rare endemic species and closely related exotic species in rivers: a case study of giant salamanders in Japan | 河川における希少固有種と近縁外来種の環境DNA評価の流域規模への適用 : 日本のオオサンショウウオを事例として | Fukumoto et al. |
262 | A framework for estimating the sensitivity of eDNA surveys | 環境DNA調査の感度を推定するための枠組み | Furlan et al. |
263 | Moving environmental DNA methods from concept to practice for monitoring aquatic macroorganisms | 水生マクロ生物モニタリングのための環境DNA法のコンセプトから実践への移行 | Goldberg et al. |
264 | An eDNA assay for Irish Petromyzon marinus and Salmo trutta and field validation in running water | アイルランドのPetromyzon marinusとSalmo truttaの環境DNAアッセイと流水中でのフィールド検証 | Gustavson et al. |
265 | How will the ‘molecular revolution’ contribute to biological recording? | 分子革命」は生物学的記録にどのように貢献するのだろうか? | Handley et al. |
266 | Environmental DNA (eDNA) Sampling Improves Occurrence and Detection Estimates of Invasive Burmese Pythons | 環境DNAサンプリングが外来ビルマニシキヘビの出現率と検出率を向上させる | Hunter et al. |
267 | Development and application of an eDNA method to detect and quantify a pathogenic parasite in aquatic ecosystems | 水生生態系における病原性寄生虫の検出と定量を目的とした環境DNA法の開発と応用 | Huver et al. |
268 | Environmental DNA as an effective tool for detection of imperiled fishes | 絶滅の危機に瀕している魚類を検出するための有効なツールとしての環境DNA | Janosik and Johnston |
269 | Improving confidence in environmental DNA species detection | 環境DNA種の検出における信頼性の向上 | Jerde et al. |
270 | Quantification of eDNA shedding rates from invasive bighead carp Hypophthalmichthys nobilis and silver carp Hypophthalmichthys molitrix | コクレン (Hypophthalmichthys nobilis) およびハクレン (Hypophthalmichthys molitrix) からの環境DNA放出率の定量化 | Klymus et al. |
271 | A reply to Iversen et al.’s comment “Monitoring of animal abundance by environmental DNA — An increasingly obscure perspective” | Iversenらのコメント “環境DNAによる動物個体数のモニタリング-ますます不明瞭になる視点 “への返信 | Klymus et al. |
272 | Characterizing the distribution of an endangered salmonid using environmental DNA analysis | 環境DNA分析を用いた絶滅危惧種サケ科魚類の分布の特徴づけ | Laramie et al. |
273 | Monitoring of animal abundance by environmental DNA — An increasingly obscure perspective: A reply to Klymus et al., 2015 | 環境DNAによる動物生息数のモニタリング-ますます不明瞭になる視点 : Klymusら、2015年への返信 | Lversen et al. |
274 | The effect of dilution and the use of a post-extraction nucleic acid purification column on the accuracy, precision, and inhibition of environmental DNA samples | 希釈と抽出後核酸精製カラムの使用が環境DNAサンプルの精度・正確さ・阻害に及ぼす影響 | McKee et al. |
275 | Techniques for the practical collection of environmental DNA: filter selection, preservation, and extraction | 環境DNAの実用的な収集技術 : フィルターの選択・保存・抽出 | Minamoto et al. |
276 | MiFish, a set of universal PCR primers for metabarcoding environmental DNA from fshes: detection of more than 230subtropical marine species | MiFish、魚類から環境DNAをメタバーコードするためのユニバーサルPCRプライマーセット : 230種以上の亜熱帯性海洋魚類の検出 | Miya et al. |
277 | Reconstructing long-term human impacts on plant communities: an ecological approach based on lake sediment DNA | 植物群落に対する長期的な人間の影響の再構築 : 湖底堆積物DNAに基づく生態学的アプローチ | Pansu et al. |
278 | Ancient and modern environmental DNA | 古代と現代の環境DNA | Pedersen et al. |
279 | Applications and limitations of measuring environmental DNA as indicators of the presence of aquatic animals | 水生動物の存在を示す指標としての環境DNA測定の応用と限界 | Rees et al. |
280 | The room temperature preservation of filtered environmental DNA samples and assimilation into a phenol–chloroform–isoamyl alcohol DNA extraction | 濾過した環境DNAサンプルの室温保存とフェノール-クロロホルム-イソアミルアルコールDNA抽出への同化 | Renshaw et al. |
281 | Drinking water as a source of environmental DNA for the detection of terrestrial wildlife species | 陸上野生生物種を検出するための環境DNA回収源としての飲料水 | Rodgers and Mock |
282 | The downside of eDNA as a survey tool in water bodies | 水域における調査ツールとしての環境DNAの欠点 | Roussel et al. |
283 | Modeling the Sensitivity of Field Surveys for Detection of Environmental DNA (eDNA) | 環境DNA検出のためのフィールド調査の感度のモデル化 | Schultz and Lance |
284 | Development of species-specific environmental DNA (eDNA) markers for invasive aquatic plants | 侵略的水生植物の種特異的な環境DNAマーカーの開発 | Scriver et al. |
285 | Monitoring the near-extinct European weather loach in Denmark based on environmental DNA from water samples | 水サンプルからの環境DNAに基づくデンマークにおける絶滅寸前のヨーロッパドジョウのモニタリング | Sigsgaard et al. |
286 | Active and passive environmental DNA surveillance of aquatic invasive species | 水生外来種の能動的・受動的環境DNA調査 | Simmons et al. |
287 | Environmental DNA sampling is more sensitive than a traditional survey technique for detecting an aquatic invader | 環境DNAサンプリングは、水生外来生物の検出において従来の調査手法よりも感度が高い | Smart et al. |
288 | Using environmental DNA methods to improve detectability in a hellbender (Cryptobranchus alleganiensis) monitoring program | ヘルベンダー (Cryptobranchus alleganiensis) モニタリングプログラムにおける検出率向上のための環境DNA手法の利用 | Spear et al. |
289 | Quantifying effects of UV-B, temperature, and pH on eDNA degradation in aquatic microcosms | 水中マイクロコズムにおける環境DNA分解に対するUV-B・温度・pHの影響の定量化 | Strickler et al. |
290 | Effects of sample processing on the detection rate of environmental DNA from the Common Carp (Cyprinus carpio) | コイからの環境DNA検出率に及ぼすサンプル処理の影響 | Takahara et al. |
291 | Environmental DNA – An emerging tool in conservation for monitoring past and present biodiversity | 環境DNA – 過去と現在の生物多様性をモニタリングするための保全における新たなツール | Thomsen et al. |
292 | Fish environmental DNA is more concentrated in aquatic sediments than surface water | 魚の環境DNAは表流水よりも水生堆積物に多く含まれる | Turner et al. |
293 | Long duration, room temperature preservation of filtered eDNA samples | ろ過した環境DNAサンプルの長期室温保存 | Wegleitner et al. |
294 | Environmental DNA particle size distribution from Brook Trout (Salvelinus fontinalis) | ブルック・トラウト (Salvelinus fontinalis) の環境DNA粒度分布 | Wilcox et al. |
295 | The Dual Challenges of Generality and Specificity When Developing Environmental DNA Markers for Species and Subspecies of Oncorhynchus | Oncorhynchusの種および亜種の環境DNAマーカー開発における一般性と特異性の二重の課題 | Wilcox et al. |
296 | An eDNA Assay to Monitor a Globally Invasive Fish Species from Flowing Freshwater | 流下する淡水から世界的な外来魚種をモニタリングする環境DNAアッセイ | Adrian-Kalchhauser and Burkhardt-Holm |
297 | The ecology of environmental DNA and implications for conservation genetics | 環境DNAの生態学と保全遺伝学への示唆 | Barnes and Turner |
298 | Detection of Adult Green Sturgeon Using Environmental DNA Analysis | 環境DNA分析によるアオチョウザメ成魚の検出 | Bergman et al. |
299 | Environmental DNA (eDNA) detection and habitat occupancy of threatened spotted gar (Lepisosteus oculatus) | 絶滅危惧種スポッテッドガー (Lepisosteus oculatus) の環境DNA検出と生息地占有率 | Boothroyd et al. |
300 | A primer for use of genetic tools in selecting and testing the suitability of set-aside sites protected from deep-sea seafloor massive sulfide mining activities | 深海底大量硫化物採掘活動から保護されるセット・アサイド・サイトの選定と適合性テストにおける遺伝学的ツールの使用に関する入門書 | Boschen et al. |
301 | Metabarcoding of marine zooplankton: prospects, progress and pitfalls | 海洋動物プランクトンのメタバーコーディング : 展望・進展・落とし穴 | Bucklin et al. |
302 | Improving the containment of a freshwater invader using environmental DNA (eDNA) based monitoring | 環境DNAを用いたモニタリングにより、淡水域の侵略者の封じ込めを改善する | Bylemans et al. |
303 | In silico assessment of primers for eDNA studies using PrimerTree and application to characterize the biodiversity surrounding the Cuyahoga River | PrimerTreeを用いた環境DNA研究用プライマーのインシリコ評価と、Cuyahoga川周辺の生物多様性の特徴付けへの応用 | Cannon et al. |
304 | Environmental DNA Marker Development with Sparse Biological Information: A Case Study on Opossum Shrimp (Mysis diluviana) | 生物学的情報が乏しい場合の環境DNAマーカー開発 : オポッサムシュリンプ (Mysis diluviana) のケーススタディ | Carim et al. |
305 | An environmental DNA assay for detecting Arctic grayling in the upper Missouri River basin, North America | 北米ミズーリ川上流域におけるホッキョクグレイリング検出のための環境DNA測定法 | Carim et al. |
306 | An environmental DNA marker for detecting nonnative brown trout (Salmo trutta) | 外来ブラウントラウト (Salmo trutta) を検出するための環境DNAマーカー | Carim et al. |
307 | Development of species-specific primers with potential for amplifying eDNA from imperilled freshwater unionid mussels | 絶滅の危機に瀕した淡水性イシガイ類から環境DNAを増幅する可能性のある種特異的プライマーの開発 | Cho et al. |
308 | Spatial Representativeness of Environmental DNA Metabarcoding Signal for Fish Biodiversity Assessment in a Natural Freshwater System | 自然淡水系における魚類の生物多様性評価のための環境DNAメタバーコードシグナルの空間的代表性 | Civade et al. |
309 | An Easy Phylogenetically Informative Method to Trace the Globally Invasive Potamopyrgus Mud Snail from River’s eDNA | 世界的外来種ポタモピルグス・マッドスネイルを河川の環境DNAから簡単に追跡する系統学的に有益な方法 | Clusa et al. |
310 | Laboratory and field validation of a simple method for detecting four species of non-native freshwater fish using eDNA | 環境DNAを用いた4種の外来淡水魚の簡易検出法の実験室および野外での検証 | Davison et al. |
311 | Detection and characterisation of the biopollutant Xenostrobus securis (Lamarck 1819) Asturian population from DNA Barcoding and eBarcoding | DNAバーコーディングとeBarcodingによる生物汚染物質Xenostrobus securis (Lamarck 1819) オーストラリアの個体群の検出と特徴づけ | Devloo-Delva et al. |
312 | Environmental DNA for Detection of Endangered Grouper Species (Epinephelus spp.) | 絶滅危惧種ハタハタ (Epinephelus spp.) の検出のための環境DNA | Doğdu and Turan |
313 | Environmental DNA analysis for estimating the abundance and biomass of stream fish | 河川魚の資源量とバイオマスを推定するための環境DNA分析 | Doi et al. |
314 | Environmental DNA (eDNA) detects the invasive rusty crayfish Orconectes rusticus at low abundances | 環境DNAが低存在量の外来サビガニ (Orconectes rusticus) を検出 | Dougherty et al. |
315 | Potential of EnvironmentalDNA to Evaluate Northern Pike (Esox lucius) Eradication Efforts: An Experimental Test and Case Study | ノーザンパイク (Esox lucius) の駆除努力を評価するための環境DNAの可能性 : 実験的テストとケーススタディ | Dunker et al. |
316 | Quantitative PCR Assays for Detecting Loach Minnow (Rhinichthys cobitis) and Spikedace (Meda fulgida) in the Southwestern United States | 米国南西部におけるドジョウミノー (Rhinichthys cobitis) とクサガメ (Meda fulgida) を検出するための定量的PCRアッセイ | Dysthe et al. |
317 | Optimizing techniques to capture and extract environmental DNA for detection and quantification of fish | 魚類の検出と定量化のための環境DNAの捕獲・抽出技術の最適化 | Eichmiller et al. |
318 | Effects of temperature and trophic state on degradation of environmental DNA in lake water | 湖水中の環境DNAの分解に及ぼす水温と栄養状態の影響 | Eichmiller et al. |
319 | Detecting the movement and spawning activity of bigheaded carps with environmental DNA | 環境DNAを用いたコイの移動と産卵活動の検出 | Erickson et al. |
320 | Trails of river monsters: Detecting critically endangered Mekong giant catfish Pangasianodon gigas using environmental DNA | 川の怪物の軌跡 : 環境DNAを用いた絶滅危惧種メコンオオナマズ(Pangasianodon gigas)の検出 | Eva et al. |
321 | Quantification of mesocosm fish and amphibian species diversity via environmental DNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングによるメソコスムの魚類と両生類の種多様性の定量化 | Evans et al. |
322 | Large-Scale Monitoring of Plants through Environmental DNA Metabarcoding of Soil: Recovery, Resolution, and Annotation of Four DNA Markers | 土壌の環境DNAメタコーディングによる植物の大規模モニタリング : 4つのDNAマーカーの回収・分離・アノテーション | Fahner et al. |
323 | How to limit false positives in environmental DNA and metabarcoding? | 環境DNAとメタバーコーディングにおける偽陽性を抑えるには? | Ficetola et al. |
324 | Can environmental DNA (eDNA) be used for detection and monitoring of introduced crab species in the Baltic Sea? | バルト海における移入カニ種の検出とモニタリングに環境DNAを利用できるか? | Forsström and Vasemägi |
325 | The importance of molecular markers and primer design when characterizing biodiversity from environmental DNA (eDNA) | 環境DNAから生物多様性を解析する際の分子マーカーとプライマー設計の重要性 | Freeland |
326 | Use of environmental DNA to survey the distribution of an invasive submerged plant in ponds | 環境DNAを用いた池における外来沈水植物の分布調査 | Fujiwara et al. |
327 | Environmental DNA detection of redfin perch, Perca fluviatilis | アカヒレ (Perca fluviatilis) の環境DNA検出 | Furlan and Gleeson |
328 | Detection and identification of lampreys in Great Lakes streams using environmental DNA | 環境DNAを用いた五大湖の河川におけるヤツメウナギの検出と同定 | Gingera et al. |
329 | Critical considerations for the application of environmental DNA methods to detect aquatic species | 水生生物種を検出するための環境DNA法の適用に関する重要な考慮事項 | Goldberg et al. |
330 | Environmental DNA metabarcoding of lake fish communities reflects long-term data from established survey methods | 湖沼魚類群集の環境DNAメタバーコーディングは、確立された調査方法による長期データを反映する | Hänfling et al. |
331 | Aquatic biodiversity assessment for the lazy | 水生生物多様性アセスメント | Hoffmann et al. |
332 | Using environmental DNA to detect an endangered crayfish Cambaroides japonicus in streams | 環境DNAを用いた河川における絶滅危惧ザリガニ (Cambaroides japonicus) の検出 | Ikeda et al. |
333 | The influence of stream bottom substrate on the retention and transport of vertebrate environmental DNA | 脊椎動物の環境DNAの保持と輸送における河川底質の影響 | Jerde et al. |
334 | Making environmental DNA count | 環境DNAをカウントする | Kelly |
335 | Genetic signatures of ecological diversity along an urbanization gradient | 都市化勾配に沿った生態学的多様性の遺伝的特徴 | Kelly et al. |
336 | Detection of rare and invasive freshwater fish species using eDNA pyrosequencing: Lake Iznik ichthyofauna revised | 環境DNAパイロシークエンシングを用いた淡水魚の希少種および移入種の検出 : イズニック湖の魚類相改訂版 | Keskin et al. |
337 | Quantifying relative fish abundance with eDNA: a promising tool for fisheries management | 環境DNAによる魚類の相対的存在量の定量化 : 漁業管理のための有望なツール | Lacoursière-Roussel et al. |
338 | Estimating fish abundance and biomass from eDNA concentrations: variability among capture methods and environmental conditions | 環境DNA濃度から魚の資源量とバイオマスを推定する : 捕獲方法と環境条件による変動性 | Lacoursière-Roussel et al. |
339 | Statistical approaches to account for false-positive errors in environmental DNA samples | 環境DNAサンプルの偽陽性エラーを説明する統計的アプローチ | Lahoz-Monfort et al. |
340 | Characterization, optimization, and validation of environmental DNA (eDNA) markers to detect an endangered aquatic mammal | 絶滅が危惧される水生哺乳類を検出するための環境DNAマーカーの特性解析、最適化、検証 | Ma et al. |
341 | Fishing in the Water: Effect of Sampled Water Volume on Environmental DNA-Based Detection of Macroinvertebrates | 水から釣りをする : サンプリング水量が環境DNAに基づくマクロ無脊椎動物の検出に及ぼす影響 | Mächler et al. |
342 | Evaluation of the Environmental DNA Method for Estimating Distribution and Biomass of Submerged Aquatic Plants | 水中植物の分布と生物量を推定するための環境DNA法の評価 | Matsuhashi et al. |
343 | Sampling large geographic areas for rare species using environmental DNA: a study of bull trout Salvelinus confluentus occupancy in western Montana | 環境DNAを用いた希少種の広域サンプリング : モンタナ州西部におけるウシマス (Salvelinus confluentus) の生息調査 | Mckelvey et al. |
344 | Controlling populations of invasive pygmy mussel (Xenostrobus securis) through citizen science and environmental DNA | 市民科学と環境DNAによる侵略的ピグミー・ムール貝 (Xenostrobus securis) の個体数制御 | Miralles et al. |
345 | Use of a Filter Cartridge for Filtration of Water Samples and Extraction of Environmental DNA | 水試料のろ過と環境DNA抽出のためのフィルターカートリッジの使用 | Miya et al. |
346 | Estimating species richness using environmental DNA | 環境DNAを用いた種の豊かさの推定 | Olds et al. |
347 | An eDNA assay for river otter detection: a tool for surveying a semi-aquatic mammal | カワウソ検出のための環境DNAアッセイ : 半水棲哺乳類調査のためのツール | Padgett-Stewart et al. |
348 | Saving the doomed: Using eDNA to aid in detection of rare sturgeon for conservation (Acipenseridae) | 運命を救う : 保全のための希少チョウザメ (Acipenseridae) の検出を助ける環境DNAの使用 | Pfleger et al. |
349 | Evaluating the effects of laboratory protocols on eDNA detection probability for an endangered freshwater fish | 絶滅危惧淡水魚の環境DNA検出確率に及ぼす実験室プロトコルの影響の評価 | Piggott |
350 | Assessing Vertebrate Biodiversity in a Kelp Forest Ecosystem using Environmental DNA | 環境DNAを用いたケルプの森生態系における脊椎動物の生物多様性の評価 | Port et al. |
351 | Fine tuning for the tropics: application of eDNA technology for invasive fish detection in tropical freshwater ecosystems | 熱帯のための微調整 : 熱帯の淡水生態系における侵入魚検出のための環境DNA技術の応用 | Robson et al. |
352 | Improving herpetological surveys in eastern North America using the environmental DNA method | 環境DNA法を用いた北米東部における爬虫類調査の改善 | Roussel et al. |
353 | Quantification of environmental DNA (eDNA) shedding and decay rates for three marine fish | 3種の海産魚の環境DNA排出量と減衰率の定量化 | Sassoubre et al. |
354 | Using occupancy modelling to compare environmental DNA to traditional field methods for regional-scale monitoring of an endangered aquatic species | 絶滅の危機に瀕している水生種の地域規模モニタリングにおいて、環境DNAと従来のフィールド手法を比較するための占有率モデリングの利用 | Schmelzle and Inziger |
355 | Detection of Invasive Mosquito Vectors Using Environmental DNA (eDNA) from Water Samples | 水サンプルからの環境DNAを用いた侵入蚊ベクターの検出 | Schneider et al. |
356 | Detection of a global aquatic invasive amphibian, Xenopus laevis, using environmental DNA | 環境DNAを用いた世界的な水生外来両生類 (Xenopus laevis) の検出 | Secondi et al. |
357 | Comparison of environmental DNA metabarcoding and conventional fish survey methods in a river system | 河川水系における環境DNAメタバーコードと従来の魚類調査法の比較 | Shaw et al. |
358 | A framework for inferring biological communities from environmental DNA | 環境DNAから生物群集を推定するフレームワーク | Shelton et al. |
359 | Modelling the transport of environmental DNA through a porous substrate using continuous flow-through column experiments | 連続フロースルー・カラム実験による多孔質基質を介した環境DNAの輸送のモデル化 | Shogren et al. |
360 | Population characteristics of a large whale shark aggregation inferred from seawater environmental DNA | 海水環境DNAから推定される大型ジンベエザメの集合体の個体群特性 | Sigsgaard et al. |
361 | Environmental DNA detects Critically Endangered largetooth sawfish in the wild | 環境DNAが絶滅危惧種のカラフトノコギリダイを検出 | Simpfendorfer et al. |
362 | Worldwide analysis of sedimentary DNA reveals major gaps in taxonomic knowledge of deep-sea benthos | 深海底生生物の分類学的知識には大きなギャップがあることが、堆積物DNAの世界的な分析から明らかになった | Sinniger et al. |
363 | Assessing the cost-efficiency of environmental DNA sampling | 環境DNAサンプリングの費用対効果の評価 | Smart et al. |
364 | Inferring neutral biodiversity parameters using environmental DNA data sets | 環境DNAデータセットを用いた中立的生物多様性パラメータの推定 | Sommeria-Klein et al. |
365 | Environmental DNA (eDNA) Detection Probability Is Influenced by Seasonal Activity of Organisms | 環境DNAの検出確率は生物の季節的活動に影響される | Souza et al. |
366 | Comparison of capture and storage methods for aqueous macrobial eDNA using an optimized extraction protocol: advantage of enclosed filter | 最適化された抽出プロトコルを用いた水性大腸菌環境DNAの捕捉および保存方法の比較 : 密閉フィルターの利点 | Spens et al. |
367 | Environmental DNA as a monitoring tool for the endangered freshwater pearl mussel (Margaritifera margaritifera L.): a substitute for classical monitoring approaches? | 絶滅の危機に瀕する淡水真珠貝 (Margaritifera margaritifera L.) のモニタリングツールとしての環境DNA : 古典的モニタリングアプローチの代替? | Stoeckle et al. |
368 | Emerging Technologies to Conserve Biodiversity: Further Opportunities via Genomics. Response to Pimm et al. | 生物多様性保全のための新技術 : ゲノミクスによるさらなる機会Pimm et al. | Taylor et al. |
369 | Environmental DNA from Seawater Samples Correlate with Trawl Catches of Subarctic, Deepwater Fishes | 海水サンプルの環境DNAとトロール漁による亜寒帯深海魚の漁獲量との相関性 | Thomsen et al. |
370 | Effects of water pH and proteinase K treatment on the yield of environmental DNA from water samples | 水のpHとプロテイナーゼK処理が水試料からの環境DNAの収量に及ぼす影響 | Tsuji et al. |
371 | A sensitive environmental DNA (eDNA) assay leads to new insights on Ruffe (Gymnocephalus cernua) spread in North America | 高感度環境DNAアッセイにより、北米におけるラフィー (Gymnocephalus cernua) の拡散に関する新たな知見が得られた | Tucker et al. |
372 | A novel environmental DNA approach to quantify the cryptic invasion of non-native genotypes | 外来遺伝子型の隠蔽侵入を定量化する新しい環境DNAアプローチ | Uchii et al. |
373 | Next-generation monitoring of aquatic biodiversity using environmental DNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングを用いた水生生物多様性の次世代モニタリング | Valentini et al. |
374 | Implementation of Novel Design Features for qPCR-Based eDNA Assessment | qPCRに基づく環境DNA評価のための新規設計機能の実装 | Veldhoen et al. |
375 | Freshwater vertebrate metabarcoding on Illumina platforms using double-indexed primers of the mitochondrial 16S rRNA gene | ミトコンドリア16S rRNA遺伝子のダブルインデックスプライマーを用いたイルミナプラットフォームでの淡水脊椎動物のメタバーコーディング | Vences et al. |
376 | Understanding environmental DNA detection probabilities: A case study using a stream-dwelling char Salvelinus fontinalis | 環境中のDNA検出確率を理解する : 渓流に生息するイワナSalvelinus fontinalisを用いたケーススタディ | Wilcox et al. |
377 | No filter, no fridges: a method for preservation of water samples for eDNA analysis | フィルターなし・冷蔵庫なし : 環境DNA分析用水サンプルの保存方法 | Williams et al. |
378 | The importance of including imperfect detection models in eDNA experimental design | 環境DNA実験デザインに不完全検出モデルを含めることの重要性 | Willoughby et al. |
379 | Recognizing false positives: synthetic oligonucleotide controls for environmental DNA surveillance | 偽陽性を認識する : 環境DNA調査のための合成オリゴヌクレオチドコントロール | Wilson et al. |
380 | Environmental DNA as a ‘Snapshot’ of Fish Distribution: A Case Study of Japanese Jack Mackerel in Maizuru Bay, Sea of Japan | 魚類分布の「スナップショット」としての環境DNA : 日本海・舞鶴湾におけるアジの事例研究 | Yamamoto et al. |
381 | The use of environmental DNA of fishes as an efficient method of determining habitat connectivity | 生息地の連結性を決定する効率的な方法としての魚類の環境DNAの利用 | Yamanaka and Minamoto |
382 | On-site filtration of water samples for environmental DNA analysis to avoid DNA degradation during transportation | 輸送中のDNA劣化を避けるため、環境DNA分析用の水サンプルをその場でろ過する | Yamanaka et al. |
383 | Monitoring of noble, signal and narrowclawed crayfish using environmental DNA from freshwater samples | 淡水サンプルの環境DNAを用いたノビレザリガニ・シグナルザリガニ・ナロークローザリガニのモニタリング | Agersnap et al. |
384 | Biomonitoring of marine vertebrates in Monterey Bay using eDNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングを用いたモントレー湾における海洋脊椎動物のバイオモニタリング | Andruszkiewicz et al. |
385 | Persistence of marine fish environmental DNA and the influence of sunlight | 海産魚環境DNAの残留性と太陽光の影響 | Andruszkiewicz et al. |
386 | Environmental DNA reveals tropical shark diversity in contrasting levels of anthropogenic impact | 環境DNAが明らかにした熱帯サメの多様性 人為的影響の対照的なレベル | Bakker et al. |
387 | Residual eDNA detection sensitivity assessed by quantitative real-time PCR in a river ecosystem | 河川生態系における定量的リアルタイムPCR法による残留環境DNA検出感度の評価 | Balasingham et al. |
388 | Efficacy of Environmental DNA to Detect and Quantify Brook Trout Populations in Headwater Streams of the Adirondack Mountains, New York | ニューヨーク州アディロンダック山地の源流域におけるブルック・トラウト個体群の検出と定量化における環境DNAの有効性 | Baldigo et al. |
389 | Annual time-series analysis of aqueous eDNA reveals ecologically relevant dynamics of lake ecosystem biodiversity | 水中環境DNAの年間時系列分析から、湖沼生態系生物多様性の生態学的関連性が明らかになった | Bista et al. |
390 | Detection of a new non-native freshwater species by DNA metabarcoding of environmental samples – first record of Gammarus fossarum in the UK | 環境サンプルのDNAメタバーコーディングによる新たな外来淡水魚種の発見-英国における (Gammarus fossarum) の初記録 | Blackman et al. |
391 | DNA in a bottle—Rapid metabarcoding survey for early alerts of invasive species in ports | ボトルの中のDNA-港湾における移入種の早期警告のための迅速なメタバーコード調査 | Borrell et al. |
392 | Development and Application of an eDNA Method to Detect the Critically Endangered Trinidad Golden Tree Frog (Phytotriades auratus) in Bromeliad Phytotelmata | 絶滅危惧種トリニダード・ゴールデン・ツリー・フロッグ (Phytotriades auratus) をブロメリア植物から検出する環境DNA法の開発と応用 | Brozio et al. |
393 | Is the detection of aquatic environmental DNA influenced by substrate type? | 水生環境DNAの検出は基質の種類に影響されるか? | Buxton et al. |
394 | Seasonal variation in environmental DNA in relation to population size and environmental factors | 環境DNAの季節変動と個体数および環境要因との関係 | Buxton et al. |
395 | An environmental DNA-based method for monitoring spawning activity: a case study, using the endangered Macquarie perch (Macquaria australasica) | 環境DNAを用いた産卵活動モニタリング手法 : 絶滅危惧種マッコーリーパーチ (Macquaria australasica) を用いたケーススタディ | Bylemans et al. |
396 | Using eDNA to Detect the Distribution and Density of Invasive Crayfish in the Honghe-Hani Rice Terrace World Heritage Site | 環境DNAを用いた世界遺産・虹河ハニ棚田における外来ザリガニの分布と密度の検出 | Cai et al. |
397 | A Noninvasive Tool to Assess the Distribution of Pacific Lamprey (Entosphenus tridentatus) in the Columbia River Basin | コロンビア川流域におけるパシフィック・ランプリ (Entosphenus tridentatus) の分布を評価するための非侵襲的ツール | Carim et al. |
398 | A qPCR MGB probe based eDNA assay for European freshwater pearl mussel (Margaritifera margaritifera L.) | 欧州産淡水真珠貝 (Margaritifera margaritifera L.) のqPCR MGBプローブベースの環境DNAアッセイ法 | Carlsson et al. |
399 | eDNA for detection of five highly invasive molluscs. A case study in urban rivers from the Iberian Peninsula | 環境DNAによる5種の高度侵入軟体動物の検出イベリア半島の都市河川におけるケーススタディ | Clusa et al. |
400 | An extremely sensitive nested PCR-RFLP mitochondrial marker for detection and identification of salmonids in eDNA from water samples | 水試料からの環境DNA中のサケ科魚類の検出と同定のための極めて高感度なネステッドPCR-RFLPミトコンドリアマーカー | Clusa et al. |
401 | Predicting the ecological quality status of marine environments from eDNA metabarcoding data using supervised machine learning | 教師あり機械学習を用いた環境DNAメタバーコードデータからの海洋環境の生態学的品質状態の予測 | Cordier et al. |
402 | Application of environmental DNA analysis to inform invasive fish eradication operations | 外来魚駆除作戦への環境DNA分析の応用 | Davison et al. |
403 | Environmental DNA metabarcoding: Transforming how we survey animal and plant communities | 環境DNAメタバーコーディング : 動植物群集の調査方法を変える | Deiner et al. |
404 | Long-range PCR allows sequencing of mitochondrial genomes from environmental DNA | 長距離PCRにより環境DNAからミトコンドリアゲノムの配列決定が可能に | Deiner et al. |
405 | Evaluation of Filtration and DNA Extraction Methods for Environmental DNA Biodiversity Assessments across Multiple Trophic Levels | 複数の栄養段階にわたる環境DNA生物多様性評価のためのろ過およびDNA抽出法の評価 | Djurhuus et al. |
406 | Detection of an endangered aquatic heteropteran using environmental DNA in a wetland ecosystem | 湿地生態系における環境DNAを用いた絶滅危惧水生異翅類の検出 | Doi et al. |
407 | Isopropanol precipitation method for collecting fish environmental DNA | 魚類環境DNA収集のためのイソプロパノール沈殿法 | Doi et al. |
408 | Water sampling for environmental DNA surveys by using an unmanned aerial vehicle | 無人航空機による環境DNA調査のための採水 | Doi et al. |
409 | Behavior and season affect crayfish detection and density inference using environmental DNA | 行動と季節はザリガニの検出と環境DNAを用いた密度推定に影響する | Dunn et al. |
410 | Environmental DNA assays for the sister taxa sauger (Sander canadensis) and walleye (Sander vitreus) | 姉妹分類群であるサウガー (Sander canadensis) とウォールアイ (Sander vitreus) の環境DNAアッセイ | Dysthe et al. |
411 | Seasonal trends in eDNA detection and occupancy of bigheaded carps | コイの環境DNA検出と占有率の季節的傾向 | Erickson et al. |
412 | Fish community assessment with eDNA metabarcoding: effects of sampling design and bioinformatic filtering | 環境DNAメタバーコーディングによる魚類群集の評価 : サンプリングデザインと生物情報学的フィルタリングの効果 | Evans et al. |
413 | Comparative Cost and Effort of Fish Distribution Detection via Environmental DNA Analysis and Electrofishing | 環境DNA分析と電気漁業による魚類分布検出のコストと労力の比較 | Evans et al. |
414 | Improving reliability in environmental DNA detection surveys through enhanced quality control | 品質管理の強化による環境DNA検出調査の信頼性向上 | Furlan and Gleeson |
415 | Development of a sensitive detection method to survey pelagic biodiversity using eDNA and quantitative PCR: a case study of devil ray at seamounts | 環境DNAと定量的PCRを用いた遠洋生物多様性調査のための高感度検出法の開発 : 海山におけるデビルレイの事例研究 | Gargan et al. |
416 | qPCR Detection of Early Life History Stage Chrysaora quinquecirrha (Sea Nettles) in Barnegat Bay, New Jersey | ニュージャージー州バーネガット湾における初期生活史段階Chrysaora quinquecirrha (海イラクサ) のqPCR検出 | Gaynor et al. |
417 | Management of invasive species in inland waters: technology development and international cooperation | 内水面における移入種の管理 : 技術開発と国際協力 | Gingera et al. |
418 | Use of environmental DNA (eDNA) and water quality data to predict protozoan parasites outbreaks in fish farms | 養殖場における原虫寄生虫発生を予測するための環境DNAと水質データの利用 | Gomes et al. |
419 | Environmental DNA in subterranean biology: range extension and taxonomic implications for Proteus | 地中生物学における環境DNA : プロテウス菌の生息域拡大と分類学的意味合い | Gorički et al. |
420 | Dealing with false positive and false negative errors about species occurrence at multiple levels | 複数のレベルにおける種の発生に関する偽陽性および偽陰性のエラーへの対処 | Guillera-Arroita et al. |
421 | Application of environmental DNA analysis for the detection of Opisthorchis viverrini DNA in water samples | 水試料中のOpisthorchis viverrini DNA検出のための環境DNA分析の応用 | Hashizume et al. |
422 | Environmental DNA monitoring and management of invasive fish: comparison of eDNA and fyke netting | 外来魚の環境DNAモニタリングと管理 : 環境DNAと刺網の比較 | Hinlo et al. |
423 | Methods to maximise recovery of environmental DNA from water samples | 水試料から環境DNAを最大限に回収する方法 | Hinlo et al. |
424 | Detection limits of quantitative and digital PCR assays and their influence in presence-absence surveys of environmental DNA | 環境DNAの存在-非存在調査における定量的およびデジタルPCRアッセイの検出限界とその影響 | Hunter et al. |
425 | Tropical-forest mammals as detected by environmental DNA at natural saltlicks in Borneo | ボルネオ島の自然塩田における環境DNAから検出された熱帯林の哺乳類 | Ishige et al. |
426 | Rapid degradation of longer DNA fragments enables the improved estimation of distribution and biomass using environmental DNA | より長いDNA断片の迅速な分解により、環境DNAを用いた分布とバイオマスの推定が可能になる | Jo et al. |
427 | Environmental DNA method for estimating salamander distribution in headwater streams, and a comparison of water sampling methods | 源流域におけるサンショウウオ分布推定のための環境DNA法と採水方法の比較 | Katano et al. |
428 | Genetic and Manual Survey Methods Yield Different and Complementary Views of an Ecosystem | 遺伝的調査と手作業による調査は、生態系について異なる補完的な見解をもたらす | Kelly et al. |
429 | At the forefront: evidence of the applicability of using environmental DNA to quantify the abundance of fish populations in natural lentic waters with additional sampling considerations | 最前線 : 自然のレンズ状水域における魚類個体数の定量化のために環境DNAを使用することの適用可能性を示す証拠であり、さらにサンプリングを考慮する必要がある | Klobucar et al. |
430 | Metabarcoding of Environmental DNA Samples to Explore the Use of Uranium Mine Containment Ponds as a Water Source for Wildlife | 野生動物の水源としてのウラン鉱山の貯留池の利用を探るための環境DNAサンプルのメタバーコード化 | Klymus et al. |
431 | Environmental DNA (eDNA) metabarcoding assays to detect invasive invertebrate species in the Great Lakes | 五大湖における侵略的無脊椎動物種を検出するための環境DNAメタバーコードアッセイ | Klymus et al. |
432 | Experimental observations on the decay of environmental DNA from bighead and silver carps | タチウオとコイから採取した環境DNAの崩壊に関する実験的観察 | Lance et al. |
433 | Environmental DNA (eDNA) detects the invasive crayfishes Orconectes rusticus and Pacifastacus leniusculus in large lakes of North America | 北米の大型湖沼における環境DNAによる外来ザリガニOrconectes rusticusとPacifastacus leniusculusの検出 | Larson et al. |
434 | DNA amplification in the field: move over PCR, here comes LAMP | 現場でのDNA増幅 : PCRに代わってLAMPが登場 | Lee et al. |
435 | eDNA metabarcoding: a promising method for anuran surveys in highly diverse tropical forests | 環境DNAメタバーコーディング : 多様性の高い熱帯林におけるアヌラン調査のための有望な手法 | Lopes et al. |
436 | A framework for developing and validating taxon‐specific primers for specimen identification from environmental DNA | 環境DNAからの標本同定のための分類群特異的プライマー開発と検証の枠組み | MacDonald and Sarre |
437 | A Rapid‐Assessment Method to Estimate the Distribution of Juvenile Chinook Salmon in Tributary Habitats Using eDNA and Occupancy Estimation | 環境DNAと占有率推定を用いた支流生息域におけるチヌークサーモン稚魚の分布推定のための迅速評価法 | Matter et al. |
438 | On the way for detecting and quantifying elusive species in the sea: The Octopus vulgaris case study | 海中のとらえどころのない種の検出と定量化への道 : タコのケーススタディ | Mauvisseau et al. |
439 | Environmental DNA reflects spatial and temporal jellyfish distribution | 環境DNAは空間的・時間的クラゲ分布を反映する | Minamoto et al. |
440 | Nuclear internal transcribed spacer-1 as a sensitive genetic marker for environmental DNA studies in common carp Cyprinus carpio | コイの環境DNA研究のための高感度遺伝マーカーとしての核内転写スペーサー-1 | Minamoto et al. |
441 | Establishing an environmental DNA method to detect and estimate the biomass of Sakhalin taimen, a critically endangered Asian salmonid | 絶滅が危惧されるアジアのサケ科魚類、サハリンタイメンのバイオマスを検出・推定する環境DNA手法の確立 | Mizumoto et al. |
442 | Using Environmental DNA to Improve Species Distribution Models for Freshwater Invaders | 環境DNAを用いた淡水外来生物の種分布モデルの改善 | Muha et al. |
443 | Spatial distribution of environmental DNA in a nearshore marine habitat | 近海の海洋生息域における環境DNAの空間分布 | O’Donnell et al. |
444 | Comparison of American Fisheries Society (AFS) Standard Fish Sampling Techniques and Environmental DNA for Characterizing Fish Communities in a Large Reservoir | 大規模貯水池における魚類群集の特徴付けのための米国水産学会 (AFS) 標準魚類サンプリング技術と環境DNAの比較 | Perez et al. |
445 | An environmental DNA assay for detecting Macquarie perch, Macquaria australasica | マッコーリーパーチ (Macquariaustralasica) を検出するための環境DNAアッセイ法 | Piggott |
446 | Decline of a giant salamander assessed with historical records, environmental DNA and multi‐scale habitat data | オオサンショウウオの減少を歴史的記録、環境DNA、マルチスケールの生息地データで評価 | Pitt et al. |
447 | Wanted dead or alive? Using metabarcoding of environmental DNA and RNA to distinguish living assemblages for biosecurity applications | 生きているのか死んでいるのか?環境中のDNAとRNAをメタバーコード化して生物群集を識別し、バイオセキュリティに役立てる | Pochon et al. |
448 | The detection of great crested newts year round via environmental DNA analysis | 環境DNA分析による通年のオオカンムリイモリの検出 | Rees et al. |
449 | Living quarters of a living fossil – Uncovering the current distribution pattern of the rediscovered Hula painted frog (Latonia nigriventer) using environmental DNA | 生きた化石の居住区 – 環境DNAを用いて、再発見されたフラペインテッドフロッグ (Latonia nigriventer) の現在の分布パターンを解明する | Renan et al. |
450 | Identifying a breeding habitat of a critically endangered fish, Acheilognathus typus, in a natural river in Japan | 日本の自然河川における絶滅危惧魚類ゼニタナゴ (Acheilognathus typus) の繁殖生息地の特定 | Sakata et al. |
451 | Environmental DNA (eDNA) Shedding and Decay Rates to Model Freshwater Mussel eDNA Transport in a River | 河川における淡水イガイの環境DNA輸送をモデル化するための環境DNAの流出と崩壊速度 | Sansom et al. |
452 | Environmental DNA characterization of amphibian communities in the Brazilian Atlantic forest: Potential application for conservation of a rich and threatened fauna | ブラジルの大西洋岸森林における両生類群集の環境DNA解析 : 豊かで絶滅の脅威にさらされている動物群の保全に応用できる可能性 | Sasso et al. |
453 | Usefulness and limitations of sample pooling for environmental DNA metabarcoding of freshwater fsh communities | 淡水魚群集の環境DNAメタバーコーディングにおけるサンプルプーリングの有用性と限界 | Sato et al. |
454 | Controls on eDNA movement in streams: Transport, Retention, and Resuspension | 河川における環境DNAの移動の制御 : 輸送、保持、再懸濁 | Shogren et al. |
455 | Seawater environmental DNA refects seasonality of a coastal fsh community | 海水環境DNAは沿岸の魚群群集の季節性を反映する | Sigsgaard et al. |
456 | Making sense of the noise: The effect of hydrology on silver carp eDNA detection in the Chicago area waterway system | ノイズの意味を理解する : シカゴ地域の水系におけるシルバーコイの環境DNA検出に対する水文学の影響 | Song et al. |
457 | Development, validation, and evaluation of an assay for the detection of wood frogs (Rana sylvatica) in environmental DNA | 環境DNA中のアマガエル (Rana sylvatica) 検出のためのアッセイの開発、検証、評価 | Spangler et al. |
458 | Ecosystem biomonitoring with eDNA: metabarcoding across the tree of life in a tropical marine environment | 環境DNAを用いた生態系バイオモニタリング : 熱帯海洋環境における生命樹を横断するメタバーコーディング | Stat et al. |
459 | Using environmental DNA to assess population-wide spatiotemporal reserve use | 環境DNAを用いた集団全体の時空間的な保護区利用の評価 | Stewart et al. |
460 | A systematic approach to evaluate the influence of environmental conditions on eDNA detection success in aquatic ecosystems | 水生生態系における環境DNA検出成功に及ぼす環境条件の影響を評価する系統的アプローチ | Stoeckle et al. |
461 | Aquatic environmental DNA detects seasonal fish abundance and habitat preference in an urban estuary | 水生環境DNAから都市河口域における季節的な魚類の存在量と生息地の嗜好性が検出される | Stoeckle et al. |
462 | Exploring the Use of Environmental DNA to Determine the Species of Salmon Redds | サケの魚群を特定するための環境DNAの利用を探る | Strobel et al. |
463 | Seasonal and diel signature of eastern hellbender environmental DNA | ヒガシヘルベンダーの環境DNAの季節的・曜日的特徴 | Takahashi et al. |
464 | Environmental DNA Detection of the Golden Tree Frog (Phytotriades auratus) in Bromeliads | ブロメリアにおけるゴールデンツリーフロッグ (Phytotriades auratus) の環境DNA検出 | Torresdal et al. |
465 | Water temperature-dependent degradation of environmental DNA and its relation to bacterial abundance | 水温に依存する環境DNAの分解と細菌量との関係 | Tsuji et al. |
466 | Distinct seasonal migration patterns of Japanese native and non-native genotypes of common carp estimated by environmental DNA | 環境DNAから推定したコイの在来型と外来型の季節的移動パターンの違い | Uchii et al. |
467 | Comparing Efficiency of American Fisheries Society Standard Snorkeling Techniques to Environmental DNA Sampling Techniques | 米国水産学会標準シュノーケリング技術と環境DNAサンプリング技術の効率比較 | Ulibarri et al. |
468 | Environmental DNA enables detection of terrestrial mammals from forest pond water | 森の池の水から陸生哺乳類を検出できる環境DNA | Ushio et al. |
469 | Tracing the quagga mussel invasion along the Rhine river system using eDNA markers: early detection and surveillance of invasive zebra and quagga mussels | 環境DNAマーカーを用いたライン川水系におけるクワガタイガイ侵入の追跡 : 侵入したゼブライガイとクワガタイガイの早期発見と監視 | Ventura et al. |
470 | Using DNA metabarcoding to investigate honey bee foraging reveals limited flower use despite high floral availability | DNAメタバーコーディングを用いたミツバチの採餌調査により、花の利用可能性が高いにもかかわらず、花の利用が限られていることが明らかになった | Vere et al. |
471 | Surveying Europe’s Only Cave-Dwelling Chordate Species (Proteus anguinus) Using Environmental DNA | 環境DNAを用いたヨーロッパ唯一の洞窟棲脊索動物種 (Proteus anguinus) の調査 | Vörös et al. |
472 | Methodological considerations for detection of terrestrial small-body salamander eDNA and implications for biodiversity conservation | 陸上小型サンショウウオ環境DNA検出のための方法論的考察と生物多様性保全への示唆 | Walker et al. |
473 | Application of environmental DNA to detect an endangered marine skate species in the wild | 絶滅の危機に瀕している海産スケートの野生種を検出するための環境DNAの応用 | Weltz et al. |
474 | Isothermal amplification of environmental DNA (eDNA) for direct field-based monitoring and laboratory confirmation of Dreissena sp. | 環境DNAの等温増幅による現場での直接モニタリングと実験室でのDreissena sp. | Williams et al. |
475 | Clearing muddied waters: Capture of environmental DNA from turbid waters | 濁流を浄化する : 濁水から環境DNAを捕捉する | Williams et al. |
476 | Quantitative PCR multiplexes for simultaneous multispecies detection of Asian carp eDNA | Asian carpの環境DNAの多種同時検出のための定量的PCRマルチプレックス | Wozney et al. |
477 | Environmental DNA metabarcoding reveals local fish communities in a species-rich coastal sea | 環境DNAメタバーコードから、種の豊富な沿岸海域の地域魚類群集が明らかになった | Yamamoto et al. |
478 | A simple method for preserving environmental DNA in water samples at ambient temperature by addition of cationic surfactant | カチオン性界面活性剤の添加による水試料中の環境DNAの簡便な常温保存法 | Yamanaka et al. |
479 | Plant DNA metabarcoding of lake sediments: How does it represent the contemporary vegetation | 湖底堆積物の植物DNAメタバーコーディング : 現代の植生をどのように表現するか | Alsos et al. |
480 | The Importance of Sound Methodology in Environmental DNA Sampling: Response to Comment | 環境DNAサンプリングにおける健全な方法論の重要性 : コメントへの回答 | Amberg et al. |
481 | PCR-based assay for Mya arenaria detection from marine environmental samples and tracking its invasion in coastal ecosystems | 海洋環境サンプルからMya arenariaを検出し、沿岸生態系への侵入を追跡するためのPCRベースのアッセイ法 | Ardura et al. |
482 | An environmental DNA sampling method for aye-ayes from their feeding traces | アイアイの摂食痕跡からの環境DNAサンプリング法 | Aylward et al. |
483 | Evaluation of environmental DNA to detect Sistrurus catenatus and Ophidiomyces ophiodiicola in crayfish burrows | ザリガニの巣穴からSistrurus catenatusとOphidiomyces ophiodiicolaを検出するための環境DNAの評価 | Baker et al. |
484 | Environmental DNA (eDNA) From the Wake of the Whales: Droplet Digital PCR for Detection and Species Identification | クジラの航跡から得られた環境DNA : 液滴デジタルPCRによる検出と種の同定 | Baker et al. |
485 | Environmental DNA detection of rare and invasive fish species in two Great Lakes tributaries | 五大湖の2つの支流における希少魚種と移入魚種の環境DNA検出 | Balasingham et al. |
486 | Environmental DNA Time Series in Ecology | 生態学における環境DNA時系列 | Bálint et al. |
487 | Accuracy, limitations and cost efficiency of eDNA‐based community survey in tropical frogs | 熱帯カエルにおける環境DNAを用いた群集調査の精度、限界、費用対効果 | Bálint et al. |
488 | Core Concept: Environmental DNA helps researchers track pythons and other stealthy creatures | コアコンセプト環境DNAがニシキヘビや他のステルス生物の追跡に役立つ | Beans |
489 | Development of quantitative PCR primers and probes for environmental DNA detection of amphibians in Ontario | オンタリオ州における両生類の環境DNA検出のための定量的PCRプライマーとプローブの開発 | Beauclerc et al. |
490 | Metabarcoding and post-sampling strategies to discover non-indigenous species: A case study in the estuaries of the central south Bay of Biscay | 非固有種を発見するためのメタバーコーディングとポストサンプリング戦略 : ビスケー湾中央南部の河口域における事例研究 | Borrell et al. |
491 | Environmental DNA illuminates the dark diversity of sharks | 環境DNAがサメの闇の多様性を照らし出す | Boussarie et al. |
492 | Shotgun metagenomics of honey DNA: Evaluation of a methodological approach to describe a multi-kingdom honey bee derived environmental DNA signature | ハチミツDNAのショットガンメタゲノミクス : 多領域ミツバチ由来の環境DNAシグネチャーを記述するための方法論的アプローチの評価 | Bovo et al. |
493 | Seasonal variation in environmental DNA detection in sediment and water samples | 堆積物および水試料中の環境DNA検出における季節変動 | Buxton et al. |
494 | Comparison of Two Citizen Scientist Methods for Collecting Pond Water Samples for Environmental DNA Studies | 環境DNA研究のための池の水試料採取における2つの市民科学者の方法の比較 | Buxton et al. |
495 | Toward an ecoregion scale evaluation of eDNA metabarcoding primers: A case study for the freshwater fish biodiversity of the Murray–Darling Basin (Australia) | 環境DNAメタバーコーディングプライマーのエコリージョン規模での評価に向けて : マレー・ダーリング盆地 (オーストラリア) の淡水魚の生物多様性に関するケーススタディ | Bylemans et al. |
496 | Does size matter? An experimental evaluation of the relative abundance and decay rates of aquatic eDNA | サイズは重要か?水生環境DNAの相対的存在量と減衰速度の実験的評価 | Bylemans et al. |
497 | Monitoring riverine fish communities through eDNA metabarcoding: determining optimal sampling strategies along an altitudinal and biodiversity gradient | 環境DNAメタバーコーディングによる河川魚群集のモニタリング : 標高勾配と生物多様性勾配に沿った最適なサンプリング戦略の決定 | Bylemans et al. |
498 | Estimating species distribution and abundance in river networks using environmental DNA | 環境DNAを用いた河川ネットワークにおける種の分布と生息数の推定 | Carraro et al. |
499 | A fate and transport model for Asian carp environmental DNA in the Chicago area waterways system | シカゴ地域水系におけるアジアコイ環境DNAの運命・輸送モデル | Cerco et al. |
500 | An analytical framework for estimating aquatic species density from environmental DNA | 環境DNAから水生生物種密度を推定するための分析的枠組み | Chambert et al. |
501 | Conditionally autoregressive models improve occupancy analyses of autocorrelated data: an example with environmental DNA | 条件付き自己回帰モデルは自己相関データの占有率分析を改善する : 環境DNAを用いた例 | Chen and Ficetola |
502 | Unlocking biodiversity and conservation studies in high diversity environments using environmental DNA (eDNA): a test with Guianese freshwater fishes | 環境DNAを用いた多様性の高い環境における生物多様性の解明と保全研究 : ギニアの淡水魚を用いた試験 | Cilleros et al. |
503 | Persistence of environmental DNA in marine systems | 海洋システムにおける環境DNAの持続性 | Collins et al. |
504 | Environmental DNA (eDNA) applications for the conservation of imperiled crayfish (Decapoda: Astacidea) through monitoring of invasive species barriers and relocated populations | 絶滅危惧種であるザリガニ (十脚目 : Astacidea) の保全のための環境DNAの応用 (外来種バリアと移転個体群のモニタリングを通して | Cowart et al. |
505 | Development and field validation of an environmental DNA (eDNA) assay for invasive clams of the genus Corbicula | コルビキュラ属外来アサリの環境DNAアッセイの開発とフィールドでの検証 | Cowart et al. |
506 | Metagenomic sequencing of environmental DNA reveals marine faunal assemblages from the West Antarctic Peninsula | 環境DNAのメタゲノム配列解析から明らかになった西南極半島の海洋動物群集 | Cowart et al. |
507 | Uses and Misuses of Environmental DNA in Biodiversity Science and Conservation | 生物多様性科学と保全における環境DNAの利用と誤用 | Cristescu and Hebert |
508 | Validation of environmental DNA (eDNA) as a detection tool for at‐risk freshwater pearly mussel species (Bivalvia: Unionidae) | リスクのある淡水真珠貝種 (二枚貝 : ユニオン科) の検出ツールとしての環境DNAの検証 | Currier et al. |
509 | Accounting for observation processes across multiple levels of uncertainty improves inference of species distributions and guides adaptive sampling of environmental DNA | 複数の不確実性のレベルにわたる観測プロセスを考慮することで、種の分布の推測が改善され、環境DNAの適応的サンプリングが導かれる | Davis et al. |
510 | Optimising the detection of marine taxonomic richness using environmental DNA metabarcoding: the effects of filter material, and extraction method | 環境DNAメタバーコーディングを用いた海洋分類学的豊かさの検出の最適化 : フィルター材料と抽出方法の効果 | Deiner et al. |
511 | Towards robust and repeatable sampling methods in eDNA based studies | 環境DNAを用いた研究における頑健で再現性のあるサンプリング法に向けて | Dickie et al. |
512 | eDNAoccupancy: An R Package for Multi-scale Occupancy Modeling of Environmental DNA Data | 環境DNAoccupancy : 環境DNAデータのマルチスケール占有モデリング用Rパッケージ | Dorazio et al. |
513 | Repurposing environmental DNA samples—detecting the western pearlshell (Margaritifera falcata) as a proof of concept | 環境DNAサンプルの再利用-概念実証としてのMargaritifera falcataの検出 | Dysthe et al. |
514 | An improved environmental DNA assay for bull trout (Salvelinus confluentus) based on the ribosomal internal transcribed spacer I | ITS1に基づくウシマス (Salvelinus confluentus) の環境DNAアッセイの改良 | Dysthe et al. |
515 | Environmental DNA (eDNA) detects the pool frog (Pelophylax lessonae) at times when traditional monitoring methods are insensitive | 環境DNA (環境DNA従来のモニタリング方法ではプールフロッグ (Pelophylax lessonae) 検出する | Eiler et al. |
516 | Freshwater fisheries assessment using environmental DNA: A primer on the method, its potential, and shortcomings as a conservation tool | 環境DNAを用いた淡水漁業評価 : 保全ツールとしての方法・その可能性・欠点に関する入門書 | Evans et al. |
517 | Exploring deep-water coral communities using environmental DNA | 環境DNAから深海のサンゴ群集を探る | Everett and Park |
518 | Environmental DNA for freshwater fish monitoring: insights for conservation within a protected area | 淡水魚モニタリングのための環境DNA : 保護区内における保全のための知見 | Fernandez et al. |
519 | Evaluating freshwater macroinvertebrates from eDNA metabarcoding: A river Nalo ́n case study | 環境DNAメタバーコーディングによる淡水大型無脊椎動物の評価 : ナロン川の事例 | Fernández et al. |
520 | DNA from lake sediments reveals long-term ecosystem changes after a biological invasion | 湖底堆積物のDNAから、生物侵入後の長期的な生態系の変化が明らかになった | Ficetola et al. |
521 | “Pitfalls in relative abundance estimation using eDNA metabarcoding” | 「環境DNAメタバーコーディングを用いた相対存在量推定における落とし穴 | Fonseca |
522 | Inferring presence of the western toad (Anaxyrus boreas) species complex using environmental DNA | 環境DNAを用いたニシキヒキガエル (Anaxyrus boreas) 複合種の存在推定 | Franklin et al. |
523 | A Non-Invasive Sampling Method for Detecting Non-Native Smallmouth Bass (Micropterus dolomieu) | 外来スモールマウスバス (Micropterus dolomieu) を検出するための非侵襲的サンプリング法 | Franklin et al. |
524 | Environmental DNA detection of aquatic invasive plants in lab mesocosm and natural field conditions | ラボのメソコズムと自然のフィールド条件における水生外来植物の環境DNA検出 | Gantz et al. |
525 | A search for standardized protocols to detect alien invasive crayfish based on environmental DNA (eDNA): A lab and field evaluation | 環境DNAに基づく、外来侵入ザリガニを検出するための標準化されたプロトコルの探索 : ラボとフィールドでの評価 | Geerts et al. |
526 | Attracting Common Carp to a bait site with food reveals strong positive relationships between fish density, feeding activity, environmental DNA, and sex pheromone release that could be used in invasive fish management | 餌でコイをベイトサイトに誘引することで、魚の密度、摂餌活動、環境DNA、性フェロモン放出の間に強い正の関係があることが明らかになった | Ghosal et al. |
527 | Degradation and dispersion limit environmental DNA detection of rare amphibians in wetlands: Increasing efficacy of sampling designs. | 劣化と分散が湿地における希少両生類の環境DNA検出を制限 : サンプリング計画の有効性の向上 | Goldberg et al. |
528 | Efects of sampling efort on biodiversity patterns estimated from environmental DNA metabarcoding surveys | 環境DNAメタバーコーディング調査から推定される生物多様性パターンに及ぼすサンプリング効率の影響 | Grey et al. |
529 | Metabarcoding of marine environmental DNA based on mitochondrial and nuclear genes | ミトコンドリアおよび核遺伝子に基づく海洋環境DNAのメタバーコーディング | Günther et al. |
530 | Occurrence of California Red-Legged (Rana draytonii) and Northern Red-Legged (Rana aurora) Frogs in Timberlands of Mendocino County, California, Examined with Environmental DNA | カリフォルニア州メンドシーノ郡の森林地帯におけるカリフォルニア・レッド・レッグ (Rana draytonii) とノーザン・レッド・レッグ (Rana aurora) の生息状況 (環境DNAによる調査 | Halstead et al. |
531 | Quantitative real-time polymerase chain reaction (PCR) and droplet digital PCR duplex assays for detecting Zostera marina DNA in coastal sediments digital PCR duplex assays for detecting Zostera marina DNA in coastal sediments | 沿岸堆積物中の Zostera marina DNA 検出のための定量的リアルタイムポリメラーゼ連鎖反応 (PCR) および液滴デジタル PCR 二重アッセイ 沿岸堆積物中の Zostera marina DNA 検出のためのデジタル PCR 二重アッセイ | Hamaguchi et al. |
532 | The sceptical optimist: challenges and perspectives for the application of environmental DNA in marine fisheries | 懐疑的な楽観主義者 : 海洋漁業における環境DNA適用の課題と展望 | Hansen et al. |
533 | Development and application of environmental DNA surveillance for the threatened crucian carp (Carassius carassius) | 絶滅が危惧されるフナの環境DNA調査の開発と応用 | Haper et al. |
534 | Searching for a signal: Environmental DNA (eDNA) for the detection of invasive signal crayfish, Pacifastacus leniusculus (Dana, 1852) | シグナルを探す外来性シグナルザリガニPacifastacus leniusculus (Dana, 1852) を検出するための環境DNA | Harper et al. |
535 | Needle in a haystack? A comparison of eDNA metabarcoding and targeted qPCR for detection of the great crested newt (Triturus cristatus) | 干し草の中の針?オオイモリ検出のための環境DNAメタバーコードと標的qPCRの比較 | Harper et al. |
536 | Prospects and challenges of environmental DNA (eDNA) monitoring in freshwater ponds | 淡水池における環境DNAモニタリングの展望と課題 | Harper et al. |
537 | Implementation options for DNA-based identification into ecological status assessment under the European Water Framework Directive | 欧州水枠組み指令に基づく生態学的状態評価へのDNAベースの同定の導入オプション | Hering et al. |
538 | Performance of eDNA assays to detect and quantify an elusive benthic fish in upland streams | 高地河川における底生魚の検出と定量化のための環境DNAアッセイの性能 | Hinlo et al. |
539 | Improving the yield of environmental DNA from filtered aquatic samples | 濾過した水生サンプルから環境DNAの収率を向上させる | Hundermark and Takahashi |
540 | Surveys of environmental DNA (eDNA): a new approach to estimate occurrence in Vulnerable manatee populations | 環境DNAの調査 : 絶滅危惧種マナティ個体群における出現率を推定する新しいアプローチ | Hunter et al. |
541 | Detection of Galba truncatula, Fasciola hepatica and Calicophoron daubneyi environmental DNA within water sources on pasture land, a future tool for fluke control? | 牧草地の水源からGalba truncatula、Fasciola hepatica、Calicophoron daubneyiの環境DNAを検出 | Jones et al. |
542 | Environmental DNA quantifcation in a spatial and temporal context: a case study examining the removal of brook trout from a high alpine basin | 空間的・時間的文脈における環境DNA定量化 : 高山盆地からのカワマス除去を検証するケーススタディ | Kamorof and Goldberg |
543 | An issue of life or death: using eDNA to detect viable individuals in wilderness restoration | 生か死かの問題 : 原生地域再生における生存個体検出のための環境DNAの利用 | Kamoroff et al. |
544 | Early detection of marine invasive species, Bugula neritina (Bryozoa: Cheilostomatida), using species-specific primers and environmental DNA analysis in Korea. | 韓国における種特異的プライマーと環境DNA分析を用いた海洋侵入種Bugula neritina (Bryozoa : Cheilostomatida) の早期検出 | Kim et al. |
545 | Environmental DNA as a new tool for assessing the biodiversity of Lake Baikal | バイカル湖の生物多様性を評価する新しいツールとしての環境DNA | Kirilchik |
546 | Environmental DNA metabarcoding studies are critically affected by substrate selection | 環境DNAメタバーコーディング研究は基質選択によって決定的な影響を受ける | Koziol et al. |
547 | Finding the pond through the weeds: eDNA reveals underestimated diversity of pondweeds | 雑草から池を見つける : 環境DNAが明らかにした池の雑草の過小評価された多様性 | Kuzmina et al. |
548 | Ethanol and sodium acetate as a preservation method to delay degradation of environmental DNA | 環境DNAの劣化を遅らせる保存法としてのエタノールと酢酸ナトリウム | Ladell et al. |
549 | Detecting Southern California’s White Sharks With Environmental DNA | 環境DNAで南カリフォルニアのホワイト・シャークを検出 | Lafferty et al. |
550 | Methods for the extraction, storage, amplification and sequencing of DNA from environmental samples | 環境試料からのDNAの抽出、保存、増幅、配列決定のための方法 | Lear et al. |
551 | Application of Environmental DNA Metabarcoding for Predicting Anthropogenic Pollution in Rivers | 河川における人為的汚染予測のための環境DNAメタバーコーディングの応用 | Li et al. |
552 | Estimating fish alpha- and beta-diversity along a small stream with environmental DNA metabarcoding | 環境DNAメタバーコーディングによる小河川沿いの魚類のαおよびβ多様性の推定 | Li et al. |
553 | The effect of filtration method on the efficiency of environmental DNA capture and quantification via metabarcoding | メタバーコーディングによる環境DNAの捕獲・定量効率に及ぼすろ過方法の影響 | Li et al. |
554 | Next-generation freshwater bioassessment: eDNA metabarcoding with a conserved metazoan primer reveals species-rich and reservoir-specific communities | 次世代の淡水生物アセスメント : 保存されたメタゾアプライマーを用いた環境DNAメタバーコード解析により、種が豊富で貯水池特有の群集が明らかになった | Lim et al. |
555 | Optimal survey designs for environmental DNA sampling | 環境DNAサンプリングのための最適な調査デザイン | Lugg et al. |
556 | Comparison of environmental DNA and bulk-sample metabarcoding using highly degenerate COI primers | 高度に退化したCOIプライマーを用いた環境DNAとバルクサンプルのメタバーコーディングの比較 | Macher et al. |
557 | Shedding light on eDNA: neither natural levels of UV radiation nor the presence of a filter feeder affect eDNA-based detection of aquatic organisms | 環境DNAに光を当てる : 自然レベルの紫外線もフィルターフィーダーの存在も、環境DNAに基づく水生生物の検出には影響しない | Mächler et al. |
558 | Choice of DNA extraction method affects DNA metabarcoding of unsorted invertebrate bulk samples | DNA抽出法の選択が無脊椎動物バルクサンプルのDNAメタバーコード化に影響する | Majaneva et al. |
559 | Environmental DNA fltration techniques afect recovered biodiversit | 環境DNAろ過技術は回収された生物多様性に影響を与える | Majaneva et al. |
560 | Environmental DNA analysis as a non‐invasive quantitative tool for reproductive migration of a threatened endemic fish in rivers | 河川における絶滅危惧固有魚類の繁殖移動に関する非侵襲的定量ツールとしての環境DNA分析 | Maruyama et al. |
561 | qPCR detection of Sturgeon chub (Macrhybopsis gelida) DNA in environmental samples | qPCRによる環境試料中のチョウザメ (Macrhybopsis gelida) DNAの検出 | Mason et al. |
562 | Environmental DNA as an efficient tool for detecting invasive crayfishes in freshwater ponds | 淡水池における外来ザリガニの効率的な検出ツールとしての環境DNA | Mauvisseau et al. |
563 | Using redundant primer sets to detect multiple native Alaskan fish species from environmental DNA | 環境DNAから複数のアラスカ固有魚種を検出するための冗長プライマーセットの使用 | Mennig et al. |
564 | Comparing local- and regional-scale estimations of the diversity of stream fish using eDNA metabarcoding and conventional observation methods | 環境DNAメタバーコーディングと従来の観察法を用いた渓流魚の多様性の局所的・地域的な推定の比較 | Nakagawa et al. |
565 | Environmental DNA (eDNA): A tool for quantifying the abundant but elusive round goby (Neogobius melanostomus) | 環境DNA : 豊富だがつかみどころのないNeogobius melanostomusを定量化するツール | Nevers et al. |
566 | Evaluation of eDNA for groundwater invertebrate detection and monitoring: a case study with endangered Stygobromus (Amphipoda: Crangonyctidae) | 地下水の無脊椎動物の検出とモニタリングのための環境DNAの評価 : 絶滅の危機に瀕しているStygobromus (両生類 : Crangonyctidae) を用いたケーススタディ | Niemiller et al. |
567 | Simulating the advection and degradation of the environmental DNA of common carp along a river | 河川におけるコイの環境DNAの移流と劣化のシミュレーション | Nukazawa et al. |
568 | Collaborative environmental DNA sampling from petal surfaces of flowering cherry Cerasus×yedoensis ‘Somei-yoshino’ across the Japanese archipelago | 日本列島を横断するソメイヨシノの花弁表面からの共同環境DNAサンプリング | Ohta et al. |
569 | Distribution and seasonal differences in Pacific Lamprey and Lampetra spp eDNA across 18 Puget Sound watersheds | ピュージェット湾18流域におけるパシフィック・ランプリとランペトラ属の環境DNAの分布と季節差 | Ostberg et al. |
570 | Citizen warnings and post checkout molecular confirmations using eDNA as a combined strategy for updating invasive species distributions | 外来種分布更新のための複合戦略として、環境DNAを用いた市民による警告とチェックアウト後の分子確認 | Parrondo et al. |
571 | Water, water everywhere: environmental DNA can unlock population structure in elusive marine species | どこでも水 : 環境DNAがとらえどころのない海洋生物の個体群構造を解き明かす | Parsons et al. |
572 | The future of biotic indices in the ecogenomic era: Integrating (e)DNA metabarcoding in biological assessment of aquatic ecosystems | エコゲノム時代における生物学的指標の未来 : 水生生態系の生物学的評価における (e) DNAメタバーコードの統合 | Pawlowski et al. |
573 | Environmental DNA: A New Low-Cost Monitoring Tool for Pathogens in Salmonid Aquaculture | 環境DNA : 鮭鱒養殖における病原体の新しい低コストモニタリングツール | Peters et al. |
574 | Environmental DNA analysis of river herring in Chesapeake Bay: A powerful tool for monitoring threatened keystone species | チェサピーク湾におけるニシンの環境DNA分析 : 絶滅の危機に瀕した要注意種を監視するための強力なツール | Plough et al. |
575 | Environmental DNA reveals quantitative patterns of fsh biodiversity in large rivers despite its downstream transportation | 環境DNAが明らかにした大河川における魚類の生物多様性の量的パターン : 下流への輸送にもかかわらず | Pont et al. |
576 | Detection of elusive fire salamander larvae (Salamandra salamandra) in streams via environmental DNA | 環境DNAを用いた河川におけるつかみどころのないオオサンショウウオ幼生の検出 | Preißler et al. |
577 | Effects of bioturbation on environmental DNA migration through soil media | 土壌媒体を介した環境DNAの移動に及ぼす生物攪乱の影響 | Prosser and Hedgpeth |
578 | Detection of the European pond turtle (Emys orbicularis) by environmental DNA: is eDNA adequate for reptiles? | 環境DNAによるヨーロッパイシガメ (Emys orbicularis) の検出 : 環境DNAは爬虫類にとって適切か? | Raemy et al. |
579 | DNA-based monitoring of the alien invasive North American crayfish Procambarus clarkii in Andean lakes (Ecuador) | アンデスの湖 (エクアドル) における北米外来ザリガニProcambarus clarkiiのDNAベースのモニタリング | Riascos et al. |
580 | An environmental DNA assay for the detection of the regionally endangered freshwater fish Alburnoides bipunctatus in Germany | ドイツにおける地域絶滅危惧淡水魚Alburnoides bipunctatusの検出のための環境DNAアッセイ | Riaz et al. |
581 | Environmental DNA detects a rare large river crayfish but with little relation to local abundance | 環境DNAから希少な大型河川ザリガニが検出されたが、地域的な豊度との関連性は低い | Rice et al. |
582 | Quantitative PCR assays for detection of five arctic fish species: Lota lota, Cottus cognatus, Salvelinus alpinus, Salvelinus malma, and Thymallus arcticus from environmental DNA | 北極圏の魚類5種を検出するための定量的PCRアッセイ : 環境DNAからのLota lota・Cottus cognatus・Salvelinus alpinus・Salvelinus malma・Thymallus arcticusの検出 | Rodgers et al. |
583 | Monitoring post-release survival of the northern corroboree frog, Pseudophryne pengilleyi, using environmental DNA | 環境DNAを用いたノーザン・コロボリー・フロッグ (Pseudophryne pengilleyi) の放流後の生存モニタリング | Rojahn et al. |
584 | eDNA metabarcoding as a new surveillance approach for coastal Arctic biodiversity | 沿岸北極圏の生物多様性に関する新たな調査手法としての環境DNAメタバーコーディング | Roussel et al. |
585 | Development of environmental DNA (eDNA) methods for detecting high-risk freshwater fishes in live trade in Canada | カナダにおける生体取引で高リスクの淡水魚を検出するための環境DNA法の開発 | Roy et al. |
586 | Using environmental DNA to detect Hypophthalmichthys molitrix during the spawning period in the Yangtze River | 環境DNAを用いた長江における産卵期のハクレン (Hypophthalmichthys molitrix) の検出 | Ruan et al. |
587 | Catching the fish with the worm: a case study on eDNA detection of the monogenean parasite Gyrodactylus salaris and two of its hosts, Atlantic salmon (Salmo salar) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) | ミミズで魚を捕まえる : 単寄生生物Gyrodactylus salarisとその2つの宿主であるアトランティックサーモン (Salmo salar) とニジマス (Oncorhynchus mykiss) の環境DNA検出に関するケーススタディ | Rusch et al. |
588 | Phylogenetic and environmental DNA insights into emerging aquatic parasites: implications for risk management | 新興の水生寄生虫に関する系統学的および環境DNA的洞察 : リスク管理への示唆 | Sana et al. |
589 | MitoFish and MiFish pipeline: a mitochondrial genome database of fish with an analysis pipeline for environmental DNA metabarcoding | MitoFishとMiFishパイプライン : 環境DNAメタバーコーディングのための解析パイプラインを備えた魚類のミトコンドリアゲノムデータベース | Sato et al. |
590 | Usefulness of environmental DNA for detecting Schistosoma mansoni occurrence sites in Madagascar. | マダガスカルにおけるSchistosoma mansoni発生場所の検出における環境DNAの有用性 | Sato et al. |
591 | Correlating sea lamprey density with environmental DNA detections in the lab | ウミヤツメの密度と実験室での環境DNA検出値の相関性 | Schloesser et al. |
592 | Inference of genetic marker concentrations from field surveys to detect environmental DNA using Bayesian updating | ベイズ更新を用いた環境DNA検出のためのフィールド調査からの遺伝子マーカー濃度の推論 | Schultz |
593 | Mu-DNA: a modular universal DNA extraction method adaptable for a wide range of sample types | Mu-DNA : 幅広いサンプルタイプに適応可能なモジュラー型万能DNA抽出法 | Sellers et al. |
594 | Environmental DNA (eDNA): A Promising Biological Survey Tool for Aquatic Species Detection | 環境DNA : 水生生物検出のための有望な生物調査ツール | Senapati et al. |
595 | Tradeoffs of a portable, field-based environmental DNA platform for detecting invasive northern pike (Esox lucius) in Alaska | アラスカにおける侵略的キタカワカマス (Esox lucius) 検出のための携帯型フィールドベース環境DNAプラットフォームのトレードオフ | Sepulveda et al. |
596 | Establishing detection thresholds for environmental DNA using receiver operator characteristic (ROC) curves | 受信演算子特性 (ROC) 曲線を用いた環境DNAの検出閾値の設定 | Serrao et al. |
597 | Acidity promotes degradation of multi-species environmental DNA in lotic mesocosms | ロティック・メソコズムにおいて、酸性度が多種環境DNAの分解を促進する | Seymour et al. |
598 | Using Seawater to Document Coral-Zoothanthella Diversity: A New Approach to Coral Reef Monitoring Using Environmental DNA | 海水を使ってサンゴ褐虫藻の多様性を記録する : 環境DNAを用いたサンゴ礁モニタリングの新しいアプローチ | Shinzato et al. |
599 | Water flow and biofilm cover influence environmental DNA (eDNA) detection in recirculating streams | 水流とバイオフィルムの被膜が循環河川における環境DNA検出に影響を与える | Shogren et al. |
600 | Metabarcoding of shrimp stomach content: Harnessing a natural sampler for fish biodiversity monitoring | エビの胃内容物のメタバーコード化 : 魚類の生物多様性モニタリングのための自然サンプラーの活用 | Siegenthaler et al. |
601 | Fecal source tracking and eDNA profling in an urban creek following an extreme rain event | 異常降雨後の都市河川における糞便発生源の追跡と環境DNAプロファイリング | Staley et al. |
602 | Combined use of eDNA metabarcoding and video surveillance for the assessment of fish biodiversity | 魚類の生物多様性評価のための環境DNAメタバーコードとビデオ監視の併用 | Stat et al. |
603 | Metabarcoding of benthic ciliate communities shows high potential for environmental monitoring in salmon aquaculture | 底生繊毛虫群集のメタバーコーディングはサケ養殖における環境モニタリングの高い可能性を示す | Stoeck et al. |
604 | GoFish: A versatile nested PCR strategy for environmental DNA assays for marine vertebrates | GoFish : 海洋脊椎動物の環境DNAアッセイのための汎用性の高いネステッドPCR戦略 | Stoeckle et al. |
605 | Utility of eDNA and occupancy models for monitoring an endangered fish across diverse riverine habitats | 多様な河川生息地にわたる絶滅危惧魚類のモニタリングにおける環境DNAと生息域モデルの有用性 | Strickland et al. |
606 | Characterising planktonic dinoflagellate diversity in Singapore using DNA metabarcoding | DNAメタバーコーディングを用いたシンガポールにおける浮遊性渦鞭毛藻の多様性の解析 | Sze et al. |
607 | ANDeTM: A fully integrated environmental DNA sampling system | ANDeTM : 完全統合型環境DNAサンプリングシステム | Thomas et al. |
608 | Concentrations of environmental DNA (eDNA) reflect spawning salmon abundance at fine spatial and temporal scales | 環境DNA濃度は、微細な空間的・時間的スケールで産卵期のサケの資源量を反映する | Tillotsona et al. |
609 | Environmental DNA sampling as a surveillance tool for cane toad Rhinella marina introductions on offshore islands | 沖合島嶼におけるオオヒキガエル (Rhinella marina) 導入の監視ツールとしての環境DNAサンプリング | Tingley et al. |
610 | Real-time multiplex PCR for simultaneous detection of multiple species from environmental DNA: an application on two Japanese medaka species | 環境DNAからの複数種の同時検出のためのリアルタイム多重PCR : 2種のメダカへの応用 | Tsuji et al. |
611 | Demonstration of the potential of environmental DNA as a tool for the detection of avian species | 鳥類種の検出ツールとしての環境DNAの可能性の実証 | Ushio et al. |
612 | Quantitative monitoring of multispecies fish environmental DNA using high-throughput sequencing | ハイスループット塩基配列決定を用いた多種魚類環境DNAの定量的モニタリング | Ushio et al. |
613 | eDNA detection of corallivorous seastar (Acanthaster cf. solaris) outbreaks on the Great Barrier Reef using digital droplet PCR | デジタル液滴PCR法によるグレートバリアリーフで発生したサンゴ礁性ウミウシの環境DNA検出 | Uthicke et al. |
614 | Entomological signatures in honey: an environmental DNA metabarcoding approach can disclose information on plant- sucking insects in agricultural and forest landscapes | ハチミツ中の昆虫学的シグネチャー : 環境DNAメタバーコードアプローチは、農業および森林ランドスケープにおける植物吸汁昆虫の情報を開示することができる | Utseri et al. |
615 | Early detection of invasive exotic insect infestations using eDNA from crop surfaces | 作物表面からの環境DNAを用いた外来昆虫の侵入の早期発見 | Valentin et al. |
616 | Using eDNA, sediment subfossils, and zooplankton nets to detect invasive spiny water flea (Bythotrephes longimanus) | 環境DNA、底質下化石、動物プランクトン網を用いた侵略的トゲウオ (Bythotrephes longimanus) の検出 | Walsh et al. |
617 | A microcosm study of surface sediment environmental DNA: decay observation, abundance estimation, and fragment length comparison. | 表層堆積物環境DNAのマイクロコズム研究 : 崩壊の観察、存在量の推定、断片長の比較 | Wei et al. |
618 | Effects of treated sample weight and DNA marker length on sediment eDNA based detection of a benthic invertebrate | 底生無脊椎動物の環境DNAによる検出における試料重量とDNAマーカーの長さの影響 | Wei et al. |
619 | Capture enrichment of aquatic environmental DNA: A first proof of concept | 水生環境DNAの捕獲濃縮 : 最初の概念実証 | Wilcox et al. |
620 | Comment: The Importance of Sound Methodology in Environmental DNA Sampling | コメント: 環境DNAサンプリングにおける健全な方法論の重要性 | Wilcox et al. |
621 | Fine‐scale environmental DNA sampling reveals climate‐mediated interactions between native and invasive trout species | ファインスケールの環境DNAサンプリングから、気候に媒介された在来種と外来種のトラウトの相互作用が明らかになった | Wilcox et al. |
622 | Detection and persistence of environmental DNA from an invasive, terrestrial mammal | 侵入した陸生哺乳類からの環境DNAの検出と持続性 | Williams et al. |
623 | Tracking the southern river terrapin (Batagur affinis) through environmental DNA: prospects and challenges | 環境DNAによるミナミカワイルカ (Batagur affinis) の追跡 : 展望と課題 | Wilson et al. |
624 | Using environmental DNA and occupancy modelling to identify drivers of eastern hellbender (Cryptobranchus alleganiensis alleganiensis) extirpation | 環境DNAと生息域モデリングを用いたイースタン・ヘルベンダー (Cryptobranchus alleganiensis alleganiensis) 絶滅の要因の特定 | Wineland et al. |
625 | Environmental DNA reveals nonmigratory individuals of Palaemon paucidens overwintering in Lake Biwa shallow waters | 環境DNAから琵琶湖浅海域で越冬するPalaemon paucidensの非移動個体が発見される | Wu et al. |
626 | Early detection of a highly invasive bivalve based on environmental DNA (eDNA) | 環境DNAに基づく高侵襲性二枚貝の早期発見 | Xia et al. |
627 | Conventional versus real‐time quantitative PCR for rare species detection | 希少種検出のための従来型定量PCRとリアルタイム定量PCRの比較 | Xia et al. |
628 | Monitoring seasonal distribution of an endangered anadromous sturgeon in a large river using environmental DNA | 環境DNAを用いた大河川における絶滅危惧溯河性チョウザメの季節的分布のモニタリング | Xu et al. |
629 | Species-specific detection of the endangered piscivorous cyprinid fish Opsariichthys uncirostris uncirostris, three-lips, using environmental DNA analysis | 環境DNA分析を用いた絶滅危惧種であるハス (Opsariichthys uncirostris) の種特異的検出 | Yamanaka et al. |
630 | Development of quantitative PCR assays for the detection and quantification of lake sturgeon (Acipenser fulvescens) environmental DNA | 湖チョウザメ (Acipenser fulvescens) 環境DNAの検出と定量化のための定量PCRアッセイの開発 | Yusishen et al. |
631 | Advantages and Limitations of Environmental DNA/RNA Tools for Marine Biosecurity: Management and Surveillance of Non-indigenous Species | 海洋バイオセキュリティのための環境 DNA/RNA ツールの利点と限界 : 非固有種の管理と監視 | Zaiko et al. |
対象となった分類群(~2019年)
魚類に次いで両生類が検出対となることが多いようです。魚類は淡水魚、両生類はサンショウウオ類やイモリが多かった覚えがあります。
最終更新: 2020/10/5
情報元: Tsuji et al.2019
掲載ジャーナル(~2020年10月まで)
総合的な雑誌であるPLoSOneに次いで、分子生物学分野のMolecular Ecology Resources、 そして環境DNAを中心とした雑誌であるEnvironmental DNA JournalがTop3となっています。
最終更新: 2020/10/5
情報元: Tsuji et al.2019+α
環境DNAで検出できる淡水魚種
環境省生物多様性センターが発表した「環境DNA分析技術を用いた淡水魚類調査手法の手引き」に掲載されているMiFishプライマー領域のDNA配列の有無と種特異的プライマーに関する論文の有無についてまとめた表になります。 種特異的プライマーの整備状況は把握しているものについて追記しました。
気になる種について検索をかけて、種特異的プライマーの表記をクリックすると参考となる論文にリンクするようになっています。
- [Update] MiFish領域の有無の表記をクリックで、NCBI genbankに学名 + 12sで検索がかかるようにしました。
※ 複数種を対象としたユニバーサルプライマーについてはこちらを参照ください。
最終更新: 2023/11/04
参考: 生物多様性センター
No. | 和名 | 学名 | 種特異的プライマー | MiFish領域の有無 | MiFish法での識別 (◎ or △) |
---|---|---|---|---|---|
1 | ミツバヤツメ | Entosphenus tridentatus | ○ | ◎ | |
2 | カワヤツメ | Lethenteron japonicum | ○ | △ | |
3 | シベリアヤツメ | Lethenteron kessleri | ○ | △ | |
4 | スナヤツメ北方種 | Lethenteron sp.N | ○ | ◎ | |
5 | スナヤツメ南方種 | Lethenteron sp.S | TaqMan | ○ | ◎ |
6 | チョウザメ | Acipenser medirostris | ○ | ◎ | |
7 | アリゲーターガー | Atractosteus spatula | ○ | ◎ | |
8 | スポッテッドガー | Lepisosteus oculatus | ○ | △ | |
9 | ロングノーズガー | Lepisosteus osseus | ○ | △ | |
10 | ショートノーズガー | Lepisosteus platostomus | ○ | △ | |
11 | ニューギニアウナギ | Anguilla bicolor pacifica | ○ | ◎ | |
12 | ニホンウナギ | Anguilla japonica | TaqMan | ○ | ◎ |
12 | ニホンウナギ | Anguilla japonica | TaqMan | ○ | ◎ |
13 | オオウナギ | Anguilla marmorata | TaqMan | ○ | ◎ |
14 | コゲウツボ | Uropterygius concolor | ○ | ◎ | |
15 | ナミダカワウツボ | Echidna rhodochilus | ○ | ◎ | |
16 | ニシン | Clupea pallasii | ○ | ◎ | |
17 | ドロクイ | Nematalosa japonica | ○ | ◎ | |
18 | エツ | Coilia nasus | ○ | ◎ | |
19 | コイ(飼育型) | Cyprinus carpio | TaqMan | ○ | ◎ |
20 | コイ(野生型) | Cyprinus carpio | TaqMan | ○ | ◎ |
21 | キンギョ | Carassius auratus | SYBR | ○ | △ |
22 | オオキンブナ | Carassius buergeri buergeri | ○ | △ | |
23 | ニゴロブナ | Carassius buergeri grandoculis | ○ | △ | |
24 | ナガブナ | Carassius buergeri subsp.1 | × | – | |
25 | キンブナ | Carassius buergeri subsp.2 | ○ | △ | |
26 | ゲンゴロウブナ | Carassius cuvieri | ○ | ◎ | |
27 | ギンブナ | Carassius sp. | ○ | △ | |
28 | フナ属の 1 種(琉球列島) | Carassius sp. | ○ | △ | |
29 | ヤリタナゴ | Tanakia lanceolata | ○ | ◎ | |
30 | ヤリタナゴ groupF(LA1) | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
31 | ヤリタナゴ groupE(LA2) | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
32 | ヤリタナゴ groupA(LA3) | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
33 | ヤリタナゴ groupG(LA4) | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
34 | ヤリタナゴ groupB | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
35 | ヤリタナゴ groupC | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
36 | ヤリタナゴ groupD-1 | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
37 | ヤリタナゴ groupD-2 | Tanakia lanceolata | ○ | – | |
38 | ヤリタナゴ groupD-3 | Tanakia lanceolata | × | – | |
39 | アブラボテ | Tanakia limbata | ○ | ◎ | |
40 | アブラボテ LI1 | Tanakia limbata | ○ | – | |
41 | アブラボテ LI2 | Tanakia limbata | ○ | – | |
42 | アブラボテ LI3 | Tanakia limbata | ○ | – | |
43 | ミヤコタナゴ | Tanakia tanago | ○ | ◎ | |
44 | イチモンジタナゴ | Acheilognathus cyanostigma | ○ | ◎ | |
45 | イチモンジタナゴ clade1 | Acheilognathus cyanostigma | ○ | – | |
46 | イチモンジタナゴ clade2 | Acheilognathus cyanostigma | ○ | – | |
47 | イチモンジタナゴ clade3 | Acheilognathus cyanostigma | ○ | – | |
48 | イタセンパラ | Acheilognathus longipinnis | SYBR | ○ | ◎ |
49 | イタセンパラ(琵琶湖-淀川型) | Acheilognathus longipinnis | ○ | – | |
50 | イタセンパラ(濃尾型) | Acheilognathus longipinnis | ○ | – | |
51 | イタセンパラ(富山型) | Acheilognathus longipinnis | × | – | |
52 | オオタナゴ | Acheilognathus macropterus | ○ | ◎ | |
53 | タナゴ | Acheilognathus melanogaster | ○ | ◎ | |
54 | カネヒラ | Acheilognathus rhombeus | ○ | ◎ | |
55 | アカヒレタビラ | Acheilognathus tabira erythropterus | ○ | ◎ | |
56 | ミナミアカヒレタビラ | Acheilognathus tabira jordani | ○ | ◎ | |
57 | セボシタビラ | Acheilognathus tabira nakamurae | ○ | ◎ | |
58 | シロヒレタビラ | Acheilognathus tabira tabira | ○ | ◎ | |
59 | キタノアカヒレタビラ | Acheilognathus tabira tohokuensis | ○ | ◎ | |
60 | ゼニタナゴ | Acheilognathus typus | TaqMan | ○ | ◎ |
61 | カゼトゲタナゴ | Rhodeus atremius atremius | TaqMan | ○ | ◎ |
62 | スイゲンゼニタナゴ | Rhodeus atremius suigensis | TaqMan | ○ | ◎ |
63 | ニッポンバラタナゴ | Rhodeus ocellatus kurumeus | ○ | ◎ | |
64 | ニッポンバラタナゴ(大阪型) | Rhodeus ocellatus kurumeus | ○ | – | |
65 | ニッポンバラタナゴ(山陽型) | Rhodeus ocellatus kurumeus | ○ | – | |
66 | ニッポンバラタナゴ(九州型) | Rhodeus ocellatus kurumeus | ○ | – | |
67 | タイリクバラタナゴ | Rhodeus ocellatus ocellatus | ○ | ◎ | |
68 | ハクレン | Hypophthalmichthys molitrix | TaqMan | ○ | △ |
69 | コクレン | Aristichthys nobilis | TaqMan | ○ | △ |
70 | ワタカ | Ischikauia steenackeri | ○ | ◎ | |
71 | パールダニオ | Danio albolineatus | ○ | ◎ | |
72 | ゼブラダニオ | Danio rerio | TaqMan(add) | ○ | ◎ |
73 | カワバタモロコ | Hemigrammocypris neglectus | TaqMan | ○ | ◎ |
74 | カワバタモロコ(本州-四国型) | Hemigrammocypris neglectus | ○ | – | |
75 | カワバタモロコ(九州型) | Hemigrammocypris neglectus | ○ | – | |
76 | ハス | Opsariichthys uncirostris uncirostris | TaqMan | ○ | ◎ |
77 | オイカワ | Zacco platypus | TaqMan(add) | ○ | ◎ |
78 | オイカワ group1 | Zacco platypus | ○ | – | |
79 | オイカワ group2 | Zacco platypus | ○ | – | |
80 | オイカワ group3 | Zacco platypus | ○ | – | |
81 | ヌマムツ | Nipponocypris sieboldii | ○ | ◎ | |
82 | ヌマムツ group1 | Nipponocypris sieboldii | ○ | – | |
83 | ヌマムツ group2 | Nipponocypris sieboldii | ○ | – | |
84 | ヌマムツ group3 | Nipponocypris sieboldii | ○ | – | |
85 | カワムツ | Nipponocypris temminckii | ○ | ◎ | |
86 | カワムツ group1 | Nipponocypris temminckii | ○ | – | |
87 | カワムツ group2 | Nipponocypris temminckii | ○ | – | |
88 | カワムツ group3 | Nipponocypris temminckii | ○ | – | |
89 | ヒナモロコ | Aphyocypris chinensis | ○ | ◎ | |
90 | ソウギョ | Ctenopharhyngodon idellus | TaqMan | ○ | ◎ |
91 | アオウオ | Mylopharyngodon piceus | ●(add) | ○ | ◎ |
92 | ヤマナカハヤ | Phoxinus lagowskii yamamotis | × | – | |
93 | ヤチウグイ | Phoxinus perenurus sachalinensis | ○ | ◎ | |
94 | アブラハヤ | Rhynchocypris lagowskii steindachneri | ○ | ◎ | |
95 | タカハヤ | Rhynchocypris oxycephalus jouyi | ○ | ◎ | |
96 | タカハヤ group1 | Rhynchocypris oxycephalus jouyi | ○ | – | |
97 | タカハヤ group2 | Rhynchocypris oxycephalus jouyi | ○ | – | |
98 | ジュウサンウグイ | Tribolodon brandtii brandtii | ○ | ◎ | |
99 | ジュウサンウグイ TBB1 | Tribolodon brandtii brandtii | ○ | – | |
100 | ジュウサンウグイ TBB2 | Tribolodon brandtii brandtii | × | – | |
101 | マルタ | Tribolodon brandtii maruta | ○ | ◎ | |
102 | ウグイ | Tribolodon hakonensis | SYBR(add) | ○ | ◎ |
103 | ウグイ group1 | Tribolodon hakonensis | ○ | – | |
104 | ウグイ group2 | Tribolodon hakonensis | ○ | – | |
105 | ウグイ group3 | Tribolodon hakonensis | ○ | – | |
106 | ウグイ group4 | Tribolodon hakonensis | ○ | – | |
107 | ウグイ group5 | Tribolodon hakonensis | ○ | – | |
108 | ウグイ group6 | Tribolodon hakonensis | ○ | – | |
109 | ウケクチウグイ | Tribolodon nakamurai | ○ | ◎ | |
110 | エゾウグイ | Tribolodon sachalinensis | ○ | ◎ | |
111 | モツゴ | Pseudorasbora parva | SYBR(add) | ○ | △ |
111 | モツゴ | Pseudorasbora parva | SYBR | ○ | △ |
112 | モツゴ group1 | Pseudorasbora parva | ○ | – | |
113 | モツゴ group2 | Pseudorasbora parva | ○ | – | |
114 | モツゴ group3 | Pseudorasbora parva | ○ | – | |
115 | モツゴ group4 | Pseudorasbora parva | ○ | – | |
116 | ウシモツゴ | Pseudorasbora pugnax | ○ | ◎ | |
117 | シナイモツゴ | Pseudorasbora pumila | ○ | ◎ | |
118 | アブラヒガイ | Sarcocheilichthys biwaensis | ○ | ◎ | |
119 | ビワヒガイ | Sarcocheilichthys variegatus microoculus | ○ | △ | |
120 | カワヒガイ | Sarcocheilichthys variegatus variegatus | ○ | △ | |
121 | カワヒガイ(東海型) | Sarcocheilichthys variegatus variegatus | ○ | – | |
122 | カワヒガイ(西日本型) | Sarcocheilichthys variegatus variegatus | ○ | – | |
123 | ムギツク | Pungtungia herzi | ○ | ◎ | |
124 | ホンモロコ | Gnathopogon caerulescens | ○ | △ | |
125 | タモロコ | Gnathopogon elongatus elongatus | ○ | △ | |
126 | タモロコ E1(西日本型) | Gnathopogon elongatus elongatus | ○ | – | |
127 | タモロコ E2(東海型) | Gnathopogon elongatus elongatus | ○ | – | |
128 | タモロコ E3(伊那型) | Gnathopogon elongatus elongatus | ○ | – | |
129 | スワモロコ | Gnathopogon elongatus suwae | × | – | |
130 | ヨドゼゼラ | Biwia yodoensis | ○ | ◎ | |
131 | ゼゼラ | Biwia zezera | ○ | ◎ | |
132 | ゼゼラ(岐阜型) | Biwia zezera | ○ | – | |
133 | ゼゼラ(琵琶湖型) | Biwia zezera | ○ | – | |
134 | ゼゼラ(山陽型) | Biwia zezera | × | – | |
135 | ゼゼラ(九州型) | Biwia zezera | × | – | |
136 | ナガレカマツカ | Pseudogobio agathonectris | ○ | ◎ | |
137 | カマツカ | Pseudogobio esocinus | ○ | ◎ | |
138 | スナゴカマツカ | Pseudogobio polystictus | ○ | ◎ | |
139 | ツチフキ | Abbottina rivularis | ○ | ◎ | |
140 | ツチフキ(大陸型) | Abbottina rivularis | ○ | – | |
141 | ツチフキ(日本在来型) | Abbottina rivularis | ○ | – | |
142 | ニゴイ | Hemibarbus barbus | ○ | △ | |
143 | コウライニゴイ | Hemibarbus labeo | ○ | △ | |
144 | ズナガニゴイ | Hemibarbus longirostris | ○ | ◎ | |
145 | コウライモロコ | Squalidus biwae tsuchigae | ○ | △ | |
146 | スゴモロコ | Squalidus chankaensis biwae | ○ | △ | |
147 | イトモロコ | Squalidus gracilis gracilis | ○ | ◎ | |
148 | イトモロコ group1 | Squalidus gracilis gracilis | ○ | – | |
149 | イトモロコ group2 | Squalidus gracilis gracilis | ○ | – | |
150 | イトモロコ group3 | Squalidus gracilis gracilis | ○ | – | |
151 | デメモロコ | Squalidus japonicus japonicus | ○ | △ | |
152 | デメモロコ(琵琶湖型) | Squalidus japonicus japonicus | ○ | – | |
153 | デメモロコ(濃尾型) | Squalidus japonicus japonicus | ○ | – | |
154 | アカヒレ | Tanichthys albonubes | ○ | ◎ | |
155 | ドジョウ | Misgurnus anguillicaudatus | TaqMan | ○ | ◎ |
156 | ドジョウ(在来系統) | Misgurnus anguillicaudatus | ○ | ◎ | |
157 | ドジョウ(大陸系統) | Misgurnus anguillicaudatus | ○ | ◎ | |
158 | キタドジョウ | Misgurnus sp.Clade A | ○ | ◎ | |
159 | シノビドジョウ | Misgurnus sp.IR | ○ | ◎ | |
160 | ヒョウモンドジョウ | Misgurnus sp.OK | ○ | ◎ | |
161 | カラドジョウ | Paramisgurnus dabryanus | ○ | ◎ | |
162 | アリアケスジシマドジョウ | Cobitis kaibarai | ○ | ◎ | |
163 | オオガタスジシマドジョウ | Cobitis magnostriata | ○ | △ | |
164 | ヤマトシマドジョウ | Cobitis matsubarae | ○ | ◎ | |
165 | サンヨウコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii minamorii | ○ | ◎ | |
166 | ビワコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii oumiensis | ○ | △ | |
167 | サンインコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii saninensis | ○ | ◎ | |
168 | トウカイコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii tokaiensis | ○ | △ | |
169 | ヨドコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii yodoensis | × | – | |
170 | オオヨドシマドジョウ | Cobitis sakahoko | ○ | ◎ | |
171 | ヒナイシドジョウ | Cobitis shikokuensis | ○ | ◎ | |
172 | オオシマドジョウ | Cobitis sp.BIWAE type A | ○ | ◎ | |
173 | ニシシマドジョウ | Cobitis sp.BIWAE type B | ○ | ◎ | |
174 | ヒガシシマドジョウ | Cobitis sp.BIWAE type C | ○ | ◎ | |
175 | トサシマドジョウ | Cobitis sp.BIWAE type D | ○ | ◎ | |
176 | ヤマトシマドジョウ A 型 | Cobitis sp.’yamato’ complex Type A | ○ | ◎ | |
177 | オンガスジシマドジョウ | Cobitis striata fuchigamii | ○ | △ | |
178 | ハカタスジシマドジョウ | Cobitis striata hakataensis | ○ | △ | |
179 | チュウガタスジシマドジョウ | Cobitis striata striata | ○ | △ | |
180 | イシドジョウ | Cobitis takatsuensis | ○ | ◎ | |
181 | タンゴスジシマドジョウ | Cobitis takenoi | ○ | △ | |
182 | アジメドジョウ | Niwaella delicata | ○ | ◎ | |
183 | アジメドジョウ G(太平洋側型) | Niwaella delicata | ○ | – | |
184 | アジメドジョウ S(日本海側型) | Niwaella delicata | ○ | – | |
185 | フクドジョウ | Barbatula oreas | ○ | ◎ | |
186 | ヒメドジョウ | Lefua costata | ○ | ◎ | |
187 | エゾホトケドジョウ | Lefua costata nikkonis | ○ | ◎ | |
188 | ホトケドジョウ | Lefua echigonia | ○ | ◎ | |
189 | ホトケドジョウ(北陸型) | Lefua echigonia | × | – | |
190 | ホトケドジョウ(近畿型) | Lefua echigonia | ○ | – | |
191 | ホトケドジョウ(東海型) | Lefua echigonia | ○ | – | |
192 | ホトケドジョウ(山形型) | Lefua echigonia | ○ | – | |
193 | ホトケドジョウ(東北型) | Lefua echigonia | ○ | – | |
194 | ホトケドジョウ(北関東型) | Lefua echigonia | ○ | – | |
195 | ホトケドジョウ(南関東型) | Lefua echigonia | ○ | – | |
196 | ホトケドジョウ(岩手型) | Lefua echigonia | ○ | – | |
197 | ナガレホトケドジョウ | Lefua sp.1 | ○ | ◎ | |
198 | ナガレホトケドジョウ(紀伊-四国型) | Lefua sp.1 | ○ | – | |
199 | ナガレホトケドジョウ(山陽-山陰型) | Lefua sp.1 | ○ | – | |
200 | トウカイナガレホトケドジョウ | Lefua sp.2 | ○ | ◎ | |
201 | アユモドキ | Parabotia curtus | TaqMan | ○ | ◎ |
202 | アリアケギバチ | Tachysurus aurantiacus | ○ | ◎ | |
203 | ネコギギ | Tachysurus ichikawai | TaqMan | ○ | ◎ |
204 | ギギ | Tachysurus nudiceps | ○ | ◎ | |
205 | ギバチ | Tachysurus tokiensis | ○ | ◎ | |
206 | コウライギギ | Pseudobagrus fulvidraco | ○ | ◎ | |
207 | ナマズ | Silurus asotus | ○ | △ | |
208 | ビワコオオナマズ | Silurus biwaensis | ○ | ◎ | |
209 | イワトコナマズ | Silurus lithophilus | ○ | △ | |
210 | タニガワナマズ | Silurus tomodai | ○ | △ | |
211 | アカザ | Liobagrus reinii | TaqMan | ○ | ◎ |
212 | アカザ Group1 | Liobagrus reinii | ○ | – | |
213 | アカザ Group2 | Liobagrus reinii | ○ | – | |
214 | チャネルキャットフィッシュ | Ictalurus punctatus | ○ | ◎ | |
215 | ヒレナマズ | Clarias fuscus | ○ | ◎ | |
216 | マダラロリカリア | Pterygoplichthys disjunctivus | ○ | △ | |
217 | シシャモ | Spirinchus lanceolatus | TaqMan | ○ | ◎ |
218 | キュウリウオ | Osmerus dentex | ○ | ◎ | |
219 | ワカサギ | Hypomesus nipponensis | ●(add) | ○ | ◎ |
220 | イシカリワカサギ | Hypomesus olidus | ○ | ◎ | |
221 | アユ | Plecoglossus altivelis altivelis | TaqMan(ミト) TaqMan(核)*(add) |
○ | ◎ |
222 | リュウキュウアユ | Plecoglossus altivelis ryukyuensis | TaqMan | ○ | ◎ |
223 | アリアケシラウオ | Salanx ariakensis | ○ | ◎ | |
224 | アリアケヒメシラウオ | Neosalanx reganius | × | – | |
225 | イトウ | Hucho perryi | TaqMan | ○ | ◎ |
226 | ブラウントラウト | Salmo trutta | ●(add) | ○ | ◎ |
227 | カワマス | Salvelinus fontinalis | ●(add) | ○ | ◎ |
228 | ゴギ | Salvelinus leucomaenis imbrius | ○ | △ | |
229 | ヤマトイワナ | Salvelinus leucomaenis japonicus | ○ | △ | |
230 | アメマス | Salvelinus leucomaenis leucomaenis | TaqMan | ○ | △ |
231 | ニッコウイワナ | Salvelinus leucomaenis pluvius | ○ | △ | |
232 | オショロコマ | Salvelinus malma krascheninnikovi | TaqMan | ○ | △ |
233 | ミヤベイワナ | Salvelinus malma miyabei | ○ | △ | |
234 | レイクトラウト | Salvelinus namaycush | ●(add) | ○ | ◎ |
235 | カラフトマス | Oncorhynchus gorbuscha | ○ | ◎ | |
236 | クニマス | Oncorhynchus kawamurae | × | – | |
237 | サケ | Oncorhynchus keta | TaqMan(add) | ○ | △ |
238 | サツキマス(アマゴ) | Oncorhynchus masou ishikawae | ○ | △ | |
239 | サクラマス(ヤマメ) | Oncorhynchus masou masou | ○ | △ | |
240 | ニジマス | Oncorhynchus mykiss | TaqMan | ○ | △ |
241 | ベニザケ(ヒメマス) | Oncorhynchus nerka | ○ | ◎ | |
242 | ビワマス | Oncorhynchus sp. | ○ | ◎ | |
243 | タウナギ(本土産) | Monopterus albus | ○ | ◎ | |
244 | タウナギ(沖縄産) | Monopterus sp. | ○ | ◎ | |
245 | イトヨ | Gasterosteus aculeatus aculeatus | TaqMan | ○ | △ |
246 | イトヨ(降海型) | Gasterosteus aculeatus aculeatus | × | – | |
247 | イトヨ(福井型) | Gasterosteus aculeatus aculeatus | × | – | |
248 | イトヨ(那須型) | Gasterosteus aculeatus aculeatus | ○ | – | |
249 | 太平洋系陸封型イトヨ | Gasterosteus aculeatus subsp.1 | ○ | ◎ | |
250 | ハリヨ | Gasterosteus aculeatus subsp.2 | ○ | △ | |
251 | ハリヨ(濃尾型) | Gasterosteus aculeatus subsp.2 | ○ | – | |
252 | ハリヨ(近江型) | Gasterosteus aculeatus subsp.2 | ○ | – | |
253 | イトヨ湖沼型(福島県) | Gasterosteus aculeatus subsp.3 | ○ | ◎ | |
254 | ニホンイトヨ | Gasterosteus nipponicus | ○ | ◎ | |
255 | ミナミトミヨ | Pungitius kaibarae | ○ | ◎ | |
256 | トミヨ属淡水型 | Pungitius sp.1 | ○ | △ | |
257 | トミヨ属汽水型 | Pungitius sp.2 | ○ | △ | |
258 | トミヨ属雄物型 | Pungitius sp.3 | ○ | △ | |
259 | ムサシトミヨ | Pungitius sp.4 | ○ | ◎ | |
260 | エゾトミヨ | Pungitius tymensis | ○ | ◎ | |
261 | アミメカワヨウジ | Hippichthys heptagonus | ○ | ◎ | |
262 | ホシイッセンヨウジ | Microphis argulus | × | – | |
263 | ヒメテングヨウジ | Microphis jagorii | × | – | |
264 | タニヨウジ | Microphis retzii | × | – | |
265 | カワボラ | Cestraeus plicatilis | ○ | ◎ | |
266 | ナガレフウライボラ | Crenimugil heterocheilos | × | – | |
267 | オニボラ | Ellochelon vaigiensis | ○ | ◎ | |
268 | アンピンボラ | Chelon subviridis | ○ | ◎ | |
269 | モンナシボラ | Moolgarda engeli | ○ | ◎ | |
270 | カマヒレボラ | Moolgarda pedaraki | ○ | ◎ | |
271 | ペヘレイ | Odontesthes bonariensis | ○ | ◎ | |
272 | ネッタイイソイワシ | Atherinomorus duodecimalis | ○ | ◎ | |
273 | ミナミギンイソイワシ | Hypoatherina temminckii | ○ | ◎ | |
274 | グリーンソードテール | Xiphophorus hellerii | ○ | ◎ | |
275 | カダヤシ | Gambusia affinis | TaqMan(add) | ○ | ◎ |
276 | グッピー | Poecilia reticulata | TaqMan(add) | ○ | ◎ |
277 | ミナミメダカ | Oryzias latipes | TaqMan | ○ | ◎ |
277 | ミナミメダカ | Oryzias latipes | TaqMan | ○ | ◎ |
278 | ミナミメダカ(ヒメダカ) | Oryzias latipes | ○ | ◎ | |
279 | キタノメダカ | Oryzias sakaizumii | TaqMan | ○ | ◎ |
280 | コモチサヨリ | Zenarchopterus dunckeri | ○ | ◎ | |
281 | クルメサヨリ | Hyporhamphus intermedius | ○ | ◎ | |
282 | アゴヒゲオコゼ | Tetraroge barbata | ○ | ◎ | |
283 | ヒゲソリオコゼ | Tetraroge nigra | × | – | |
284 | アカメ | Lates japonicus | ○ | ◎ | |
285 | インドタカサゴイシモチ | Pseudambassis ranga | ○ | ◎ | |
286 | ナンヨウタカサゴイシモチ | Ambassis interrupta | ○ | ◎ | |
287 | ハナダカタカサゴイシモチ | Ambassis macracanthus | × | – | |
288 | オヤニラミ | Coreoperca kawamebari | TaqMan | ○ | ◎ |
289 | オヤニラミ group1 | Coreoperca kawamebari | × | – | |
290 | オヤニラミ group2 | Coreoperca kawamebari | × | – | |
291 | スズキ | Lateolabrax japonicus | TaqMan | ○ | △ |
292 | シラヌイハタ | Epinephelus bontoides | ○ | ◎ | |
293 | ブルーギル | Lepomis macrochirus | TaqMan | ○ | ◎ |
294 | コクチバス | Micropterus dolomieu | ●(add) | ○ | ◎ |
294 | コクチバス | Micropterus dolomieu | TaqMan | ○ | ◎ |
295 | オオクチバス | Micropterus salmoides | TaqMan | ○ | ◎ |
296 | カガミテンジクダイ | Yarica hyalosoma | ○ | ◎ | |
297 | ワキイシモチ | Fibramia lateralis | × | – | |
298 | ヒルギヌメリテンジクダイ | Pseudamia amblyuroptera | ○ | ◎ | |
299 | ウラウチフエダイ | Lutjanus goldiei | × | – | |
300 | ダイダイコショウダイ | Plectorhinchus albovittatus | × | – | |
301 | ナンヨウチヌ | Acanthopagrus pacificus | ○ | ◎ | |
302 | アオギス | Sillago parvisquamis | ○ | ◎ | |
303 | アトクギス | Sillaginops macrolepis | ○ | ◎ | |
304 | テッポウウオ | Toxotes jaculatrix | ○ | ◎ | |
305 | カワスズメ | Oreochromis mossambicus | ●(add) | ○ | ◎ |
306 | ナイルティラピア | Oreochromis niloticus | ●(add) | ○ | ◎ |
307 | ジルティラピア | Tilapia zillii | ○ | ◎ | |
308 | ニセシマイサキ | Mesopristes argenteus | ○ | ◎ | |
309 | ヨコシマイサキ | Mesopristes cancellatus | ○ | ◎ | |
310 | シミズシマイサキ | Mesopristes iravi | ○ | ◎ | |
311 | トゲナガユゴイ | Kuhlia munda | × | – | |
312 | ヤマノカミ | Trachidermus fasciatus | ○ | ◎ | |
313 | エゾハナカジカ | Cottus amblystomopsis | ○ | ◎ | |
314 | カンキョウカジカ | Cottus hangiongensis | ○ | ◎ | |
315 | カマキリ | Cottus kazika | ○ | ◎ | |
316 | ハナカジカ | Cottus nozawae | ○ | ◎ | |
317 | ハナカジカ(北海道型) | Cottus nozawae | ○ | – | |
318 | ハナカジカ(北東北型) | Cottus nozawae | × | – | |
319 | ハナカジカ(山形型) | Cottus nozawae | ○ | – | |
320 | カジカ | Cottus pollux | ○ | △ | |
321 | カジカ小卵型 | Cottus reinii | ○ | – | |
322 | ウツセミカジカ(琵琶湖型) | Cottus reinii | ○ | – | |
323 | ウツセミカジカ(回遊型) | Cottus reinii | ○ | – | |
324 | カジカ中卵型 | Cottus sp.ME | TaqMan(add) | ○ | △ |
325 | ウラウチヘビギンポ | Enneapterygius cheni | × | – | |
326 | ヒルギギンポ | Omox biporos | × | – | |
327 | ゴマクモギンポ | Omobranchus elongatus | ○ | ◎ | |
328 | カワギンポ | Omobranchus ferox | × | – | |
329 | ナリタイトヒキヌメリ | Pseudocalliurichthys ikedai | × | – | |
330 | ツバサハゼ | Rhyacichthys aspro | ○ | ◎ | |
331 | イシドンコ | Odontobutis hikimius | ○ | ◎ | |
332 | ドンコ | Odontobutis obscura | ○ | ◎ | |
333 | ドンコ(西九州型) | Odontobutis obscura | ○ | – | |
334 | ドンコ(西瀬戸内海型) | Odontobutis obscura | ○ | – | |
335 | ドンコ(東瀬戸内海型) | Odontobutis obscura | ○ | – | |
336 | ドンコ(山陰-琵琶湖-伊勢型) | Odontobutis obscura | ○ | – | |
337 | タナゴモドキ | Hypseleotris cyprinoides | ○ | ◎ | |
338 | オウギハゼ | Bunaka gyrinoides | ○ | △ | |
339 | テンジクカワアナゴ | Eleotris fusca | ○ | ◎ | |
340 | カワアナゴ | Eleotris oxycephala | ○ | ◎ | |
341 | エリトゲハゼ | Belobranchus belobranchus | ○ | ◎ | |
342 | ヤエヤマノコギリハゼ | Butis amboinensis | ○ | ◎ | |
343 | ジャノメハゼ | Bostrychus sinensis | ○ | ◎ | |
344 | ホシマダラハゼ | Ophiocara porocephala | ○ | ◎ | |
345 | タメトモハゼ | Giuris sp.1 | ○ | ◎ | |
346 | ゴシキタメトモハゼ | Giuris sp.2 | × | – | |
347 | ドウクツミミズハゼ | Luciogobius albus | × | – | |
348 | ネムリミミズハゼ | Luciogobius dormitoris | × | – | |
349 | ナガレミミズハゼ | Luciogobius fluvialis | × | – | |
350 | ユウスイミミズハゼ | Luciogobius fonticola | ○ | ◎ | |
351 | イドミミズハゼ | Luciogobius pallidus | ○ | ◎ | |
352 | ミナミヒメミミズハゼ | Luciogobius ryukyuensis | ○ | △ | |
353 | ヒモハゼ | Eutaeniichthys gilli | ○ | ◎ | |
354 | シロウオ | Leucopsarion petersii | ○ | ◎ | |
355 | ワラスボ | Odontamblyopus lacepedii | ○ | ◎ | |
356 | アサガラハゼ | Caragobius urolepis | ○ | ◎ | |
357 | チワラスボ | Taenioides cirratus | ○ | △ | |
358 | ヒゲワラスボ | Trypauchenopsis intermedia | ○ | ◎ | |
359 | トカゲハゼ | Scartelaos histophorus | ○ | ◎ | |
360 | ムツゴロウ | Boleophthalmus pectinirostris | ○ | ◎ | |
361 | タビラクチ | Apocryptodon punctatus | ○ | ◎ | |
362 | トビハゼ | Periophthalmus modestus | ○ | ◎ | |
363 | ヒメトサカハゼ | Cristatogobius aurimaculatus | × | – | |
364 | トサカハゼ | Cristatogobius lophius | ○ | ◎ | |
365 | クロトサカハゼ | Cristatogobius nonatoae | ○ | ◎ | |
366 | シマサルハゼ | Oxyurichthys sp.2 | × | – | |
367 | ミスジハゼ | Callogobius sp. | × | – | |
368 | ハゼクチ | Acanthogobius hasta | ○ | ◎ | |
369 | ミナミアシシロハゼ | Acanthogobius insularis | ○ | ◎ | |
370 | ヨロイボウズハゼ | Lentipes armatus | ○ | ◎ | |
371 | カエルハゼ | Smilosicyopus leprurus | ○ | ◎ | |
372 | ヒノコロモボウズハゼ | Sicyopus auxilimentus | × | – | |
373 | アカボウズハゼ | Sicyopus zosterophorus | ○ | ◎ | |
374 | ボウズハゼ | Sicyopterus japonicus | ○ | ◎ | |
375 | ルリボウズハゼ | Sicyopterus lagocephalus | ○ | ◎ | |
376 | ヒスイボウズハゼ | Stiphodon alcedo | ○ | ◎ | |
377 | コンテリボウズハゼ | Stiphodon atropurpureus | × | – | |
378 | ハヤセボウズハゼ | Stiphodon imperiorientis | ○ | ◎ | |
379 | トラフボウズハゼ | Stiphodon multisquamus | × | – | |
380 | ニライカナイボウズハゼ | Stiphodon niraikanaiensis | × | – | |
381 | ナンヨウボウズハゼ | Stiphodon percnopterygionus | ○ | ◎ | |
382 | カキイロヒメボウズハゼ | Stiphodon surrufus | × | – | |
383 | ワカケサラサハゼ | Amblygobius linki | × | – | |
384 | シラヌイハゼ | Silhouettea dotui | × | – | |
385 | ニセシラヌイハゼ | Silhouettea sp. | × | – | |
386 | ギンポハゼ | Parkraemeria saltator | ○ | ◎ | |
387 | マングローブゴマハゼ | Pandaka lidwilli | ○ | ◎ | |
388 | ゴマハゼ | Pandaka sp. | ○ | ◎ | |
389 | カブキハゼ | Eugnathogobius mindora | × | – | |
390 | ホホグロハゼ | Mugilogobius cavifrons | ○ | ◎ | |
391 | フタホシハゼ | Mugilogobius fuscus | × | – | |
392 | ムジナハゼ | Mugilogobius mertoni | × | – | |
393 | コクチスナゴハゼ | Pseudogobius gastrospilos | ○ | ◎ | |
394 | マサゴハゼ | Pseudogobius masago | ○ | ◎ | |
395 | シマエソハゼ | Schismatogobius ampluvinculus | ○ | ◎ | |
396 | エソハゼ | Schismatogobius roxasi | ○ | ◎ | |
397 | ドウケハゼ | Stenogobius ophthalmoporus | × | – | |
398 | タネカワハゼ | Stenogobius sp. | ○ | ◎ | |
399 | クロミナミハゼ | Awaous melanocephalus | ○ | △ | |
400 | ショウキハゼ | Tridentiger barbatus | ○ | ◎ | |
401 | シモフリシマハゼ | Tridentiger bifasciatus | ○ | ◎ | |
402 | ヌマチチブ | Tridentiger brevispinis | ○ | △ | |
403 | ナガノゴリ | Tridentiger kuroiwae | ○ | △ | |
404 | シロチチブ | Tridentiger nudicervicus | ○ | ◎ | |
405 | チチブ | Tridentiger obscurus | ○ | △ | |
406 | アカオビシマハゼ | Tridentiger trigonocephalus | ○ | ◎ | |
407 | タスキヒナハゼ | Redigobius balteatus | ○ | ◎ | |
408 | カワクモハゼ | Bathygobius sp. | × | – | |
409 | ビワヨシノボリ | Rhinogobius biwaensis | ○ | △ | |
410 | クロヨシノボリ | Rhinogobius brunneus | ○ | △ | |
411 | カワヨシノボリ | Rhinogobius flumineus | ○ | △ | |
412 | カワヨシノボリ group1 | Rhinogobius flumineus | ○ | – | |
413 | カワヨシノボリ group2 | Rhinogobius flumineus | ○ | – | |
414 | カワヨシノボリ group3 | Rhinogobius flumineus | ○ | – | |
415 | オオヨシノボリ | Rhinogobius fluviatilis | ○ | △ | |
416 | クロダハゼ | Rhinogobius kurodai | ○ | △ | |
417 | ルリヨシノボリ | Rhinogobius mizunoi | ○ | △ | |
418 | シマヨシノボリ | Rhinogobius nagoyae | ○ | △ | |
419 | オガサワラヨシノボリ | Rhinogobius ogasawaraensis | ○ | △ | |
420 | ゴクラクハゼ | Rhinogobius similis | ○ | ◎ | |
421 | アオバラヨシノボリ | Rhinogobius sp.BB | ○ | △ | |
422 | シマヒレヨシノボリ | Rhinogobius sp.BF | ○ | △ | |
423 | ヒラヨシノボリ | Rhinogobius sp.DL | ○ | △ | |
424 | カズサヨシノボリ | Rhinogobius sp.KZ | ○ | △ | |
425 | アヤヨシノボリ | Rhinogobius sp.MO | ○ | △ | |
426 | オウミヨシノボリ | Rhinogobius sp.OM | ○ | △ | |
427 | 旧トウヨシノボリ類 | Rhinogobius sp.OR | ○ | △ | |
428 | トウカイヨシノボリ | Rhinogobius sp.TO | ○ | ◎ | |
429 | キバラヨシノボリ | Rhinogobius sp.YB | ○ | △ | |
430 | コンジキハゼ | Glossogobius aureus | ○ | ◎ | |
431 | アゴヒゲハゼ | Glossogobius bicirrhosus | × | – | |
432 | スダレウロハゼ | Glossogobius circumspectus | ○ | ◎ | |
433 | フタゴハゼ | Glossogobius sp. | × | – | |
434 | ニセツムギハゼ | Acentrogobius audax | × | – | |
435 | ホクロハゼ | Acentrogobius caninus | ○ | ◎ | |
436 | ホホグロスジハゼ | Acentrogobius suluensis | × | – | |
437 | キララハゼ | Acentrogobius viridipunctatus | ○ | ◎ | |
438 | ジュズカケハゼ | Gymnogobius castaneus | ○ | △ | |
439 | キセルハゼ | Gymnogobius cylindricus | ○ | ◎ | |
440 | イサザ | Gymnogobius isaza | ○ | ◎ | |
441 | エドハゼ | Gymnogobius macrognathos | ○ | ◎ | |
442 | ヘビハゼ | Gymnogobius mororanus | ○ | ◎ | |
443 | コシノハゼ | Gymnogobius nakamurae | × | – | |
444 | シマウキゴリ | Gymnogobius opperiens | ○ | ◎ | |
445 | スミウキゴリ | Gymnogobius petschiliensis | ○ | ◎ | |
446 | クボハゼ | Gymnogobius scrobiculatus | ○ | ◎ | |
447 | ムサシノジュズカケハゼ | Gymnogobius sp.1 | ○ | ◎ | |
448 | ホクリクジュズカケハゼ | Gymnogobius sp.2 | ○ | △ | |
449 | ホクリクジュズカケハゼ group1 | Gymnogobius sp.2 | ○ | – | |
450 | ホクリクジュズカケハゼ group2 | Gymnogobius sp.2 | ○ | – | |
451 | シンジコハゼ | Gymnogobius taranetzi | ○ | △ | |
452 | チクゼンハゼ | Gymnogobius uchidai | ○ | ◎ | |
453 | ウキゴリ | Gymnogobius urotaenia | ○ | ◎ | |
454 | ウラウチイソハゼ | Eviota ocellifer | ○ | ◎ | |
455 | ナミノコハゼ | Gobitrichinotus radiocularis | × | – | |
456 | トンガスナハゼ | Kraemeria tongaensis | × | – | |
457 | クジャクハゼ | Parioglossus caeruleolineatus | × | – | |
458 | ヒメサツキハゼ | Parioglossus interruptus | × | – | |
459 | マイコハゼ | Parioglossus lineatus | × | – | |
460 | ボルネオハゼ | Parioglossus palustris | ○ | ◎ | |
461 | コビトハゼ | Parioglossus rainfordi | × | – | |
462 | コマチハゼ | Parioglossus taeniatus | × | – | |
463 | チョウセンブナ | Macropodus ocellatus | ○ | ◎ | |
464 | タイワンキンギョ | Macropodus opercularis | ○ | ◎ | |
465 | カムルチー | Channa argus | TaqMan | ○ | ◎ |
466 | コウタイ | Channa asiatica | ○ | ◎ | |
467 | タイワンドジョウ | Channa maculata | ○ | ◎ | |
468 | クサフグ | Takifugu alboplumbeus | ○ | △ | |
469 | カタクチイワシ | Engraulis japonicus | TaqMan(add) | ○ | 追加 |
470 | マアジ | Trachurus japonicus | TaqMan(add) | ○ | 追加 |
471 | ボラ | Mugil cephalus | ●(add) | ○ | 追加 |
472 | シラウオ | Salangichthys microdon | ●(add) | ○ | 追加 |
473 | クロダイ | Acanthopagrus schlegelii | TaqMan(add) | ○ | 追加 |
473 | クロダイ | Acanthopagrus schlegelii | TaqMan(add) | ○ | 追加 |
474 | ホンベラ | Halichoeres tenuispinnis | TaqMan(add) | ○ | 追加 |
475 | イシダイ | Oplegnathus fasciatus | TaqMan(add) | ○ | 追加 |
476 | コウライオヤニラミ | Coreoperca herzi | ○ | 追加 |
<表中の凡例>
- MiFish 法での識別
◎:MiFish 法で種(もしくは亜種・系統)レベルの同定が可能な種
△:MiFish 法で種(もしくは亜種・系統)レベルの同定が難しいと判断された種 - MiFish 領域の有無
◎:登録配列あり、×:登録配列なし
- PDF tableからcsvへの変換コード BCJ-eDNAprimer-table
MiFishプライマーを用いた魚類相解析に係る誤同定チェックシート
MiFishプライマーでの魚類相調査の際、結果の精査時に使用することが望ましいサポートツールです。配列データの誤同定配列のチェックシートなどがまとめられています。
- MiFishに係る誤同定チェックシート
-> Excel LINK - MiFish法に係る誤同定チェックシートの使い方に関する解説書(2022年3月)
-> PDF LINK - MiFish法における種の識別性を確認するための分子系統樹(2022年3月)
-> PDF LINK - MiFish法における種・種内系統の識別性の判定結果一覧(2022年2月)
-> EXCEL LINK - リファレンス(MiFish配列)登録状況及び種特異的プライマー 整備状況一覧(2022年2月)
-> EXCEL LINK
最終更新: 2023/2/12
参考: 生物多様性センター
環境DNAで検出できる生物種(魚類以外)
魚類以外にも環境DNAによる検出事例が増えてきたのでまとめ始めました。
使用される際にはPrimer blastやTm calculatorなどで種特異性とアニーリング温度を確認し、文献中の条件に十分注意したうえでご使用ください。また、プローブの蛍光色素の選択にも注意して使用してください。
「種特異的プライマー」のリンクは論文へのリンクです。
最終更新: 2023/11/04
No. | 分類 | 和名 | 学名 | 種特異的プライマー | F-seq | R-seq | Pr-seq | アニーリング温度(℃) |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1 | Insecta | ヒゲナガカワトビケラ | Stenopsyche marmorata | SYBR | 非公開 | 非公開 | – | 非公開 |
2 | Bivalvia | カワヒバリガイ | Limnoperna fortunei | TaqMan | 5′-CATAGAACCCCAGCAGTTGAC A-3 | 5′-AACGAACCGCCGATTGAC-3′ | 5′- [FAM]-AGCTGCTTTATCTCTTC-[MBG]-3′ |
60 |
3 | Bivalvia | ヤマトシジミ | Corbicula japonica | TaqMan | 5′-GGTTTAGGGTAGGTGATGCTACTTTG-3′ | 5′-AAGGATTTGTTGATCCAGTTTCG-3′ | 5′-[FAM]-TTGTTTTTCATTTTCTTGGTCC-[NFQ]-[MGB]-3′ | 60 |
4 | Decapoda | スジエビ | Palaemon paucidens | TaqMan | 5′-AAGTCTAACCTGCCCACTGAGTTA-3′ | 5′-TTTAAGCCTTTTCACTTAAAGGTCA-3′ | 5′-[FAM]-ATGAGGGAAAAACTG-[NFQ]-[MGB]-3′ | 60 |
5 | Reptiles | シマヘビ | Elaphe quadrivirgata | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
6 | Reptiles | ヤマカガシ | Rhabdophis tigrinus | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
7 | Reptiles | ニホンマムシ | Gloydius blomhoffii | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
8 | Insecta | ヒメタイコウチ | Nepa hoffmanni | TaqMan | 5′-ATAGGACGAGAAGACCCTGT-3’ | 5′-ATAGGATCAATAAAACACTCATCCG-3′ | 5′-[FAM]-TTGTTGGGGCGACAGGGAGA-[TAMRA]-3′ | 60 |
9 | Echinodermata | アカナマコ(mt) | Apostichopus japonicus | SYBR | 5′-GTCACAAACTGGGATGATATGGAG-3’ | 5′-TCCACTCAACCCTAAAGCCAA-3′ | – | 65 |
10 | Echinodermata | アカナマコ(nu) | Apostichopus japonicus | SYBR | 5′-AGGTGCTCCAGACATGGCTTTCCCA-3’ | 5′-AAGCAATATTGCCCACGCAGGAG-3′ | – | 60 |
11 | Decapoda | ニホンザリガニ | Cambaroides japonicus | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
12 | Decapoda | ウチダザリガニ | Pacifastacus leniusculus | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
13 | Plant | オオカタナダモ | Egeria densa | TaqMan | 5′-CATTTCTCCTTCATTGTATTCTTTCACA-3′ | 5′-ATTTCTATCTGTATCGTAGCCACCAA-3′ | 5′-[FAM]-CGGGTCCGAACAGAAATGCTTCTCTCT–[TAMRA]-3′ | 60 |
14 | Bivalvia | マツカサガイ(クレード1の一部, 2) | Pronodularia japanensis | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
15 | Plant | クロモ | Hydrilla verticillata | TaqMan | 5′-TTTGCGCGAATATGTAGAACTTGT-3′ | 5′-GCCAAGGTTTTAGCACAGGAAA-3′ | 5′-[FAM]-ATTATTGTAGTGGATCTTCA-[NFQ]-[MGB]-3′ | 58 |
16 | Decapoda | アメリカザリガニ | Procambarus clarkii | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
17 | Amphibia | ウシガエル | Lithobates catesbeiana | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
18 | Amphibia | オオサンショウウオ | Andrias japonicus | TaqMan | 5′-CGGCGTTCTTCAACCATTG-3′ | 5′-AGCTCAAATTATTAAGGAGGTGGTTAA-3′ | 5′-[FAM]-ACACTCTTTTTAATTGCCCCAGT-[NFQ]-[MGB]-3′ | 60 |
19 | Amphibia | チュウゴクオオサンショウウオ | Andrias davidianus | TaqMan | 5′-AACACTCTTTTTAATTGCCCCAATAT-3′ | 5′-GTTCTATTTATCCTTGCATTATCCAGT-3′ | 5′-CACTAATCACCTCCTTAAT-3′ ※1 | 60 |
21 | Decapoda | モクズガニ | Eriocheir japonica | TaqMan | 5′-TGCTAAAAAAGGGAACCCACATAGA-3′ | 5′-GCGGGTATTATTATTCATAGAGTCGGT-3′ | 5′-[FAM]-AAGATACTCTTAGCGGTATAAA-[NFQ]-[MGB]-3′ | 60 |
22 | Mammalia | カワネズミ | Chimarrogale platycephala | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
23 | Scyphozoa | アカクラゲ | Chrysaora pacifica | TaqMan | 5′-CCCAGATATGGCTTTTCCTAGA-3′ | 5′-TGAGTGAGCTTGTATAGCTGATA-3′ | 5′-[FAM]-TAGGATCCTCCCTAATTG-[NFQ]-[MGB]-3′ | 60 |
24 | Insecta | タガメ | Kirkaldyia deyrolli | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
25 | Amphibia | オオダイガハラサンショウウオ | Hynobius boulengeri | TaqMan | 非公開 | 非公開 | 非公開 | 非公開 |
26 | Mammalia | ヌートリア | Myocastor coypus | TaqMan | 5′-CACTACAACAGCTTTTTCATCAATCAC-3′ | 5′-TTCCTCGTCCAATGTGGAAGT-3′ | 5′-[FAM]-TGATTAATCCGTTATATACACGCT-[NFQ]-[MGB]-3′ | 60 |
27 | Mammalia | ヨウスコウスナメリ | Neophocaena asiaeorientalis | TaqMan | 5′-TACGTTCTACCCTGAGGGCAAA-3′ | 5′-GCTTTGTCTACAGAGAACCCGC-3′ | 5′-[FAM]-FAM-TGTCAGCAATCCCTTATATTGGCAGCACAC-[TAMRA]-3′ | 60 |
※1 : プローブの蛍光色素が論文で未記載
MiFishデータベースに登録されている魚種ごとの配列数
日本淡水魚を中心にMiFishデータベースに登録されている種に対する登録配列数をまとめました。MiFish領域の列が×でかつ、配列数が0のものは現状公開されているMiFishのデータベースには無いものになります。ただ更新が活発なのでNCBIには既にあるかもしれません。
ここで表記してるものに関してはNCBIにのみ登録配列があっても、今はあえて追加はしておりません。
最終更新: 2020/10/16
情報元: Miya et al. 2020
ID | 和名 | 学名 | MiFish 領域 |
MiFishDB 登録配列数 |
---|---|---|---|---|
1 | ミツバヤツメ | Entosphenus tridentatus | ◎ | 2 |
2 | スナヤツメ北方種 | Lethenteron sp. N. | ◎ | 8 |
3 | スナヤツメ南方種 | Lethenteron sp. S. | ◎ | 6 |
4 | シベリアヤツメ | Lethenteron kessleri | ○ | 1 |
5 | カワヤツメ | Lethenteron japonicum | ○ | 1 |
6 | チョウザメ | Acipenser medirostris | ○ | 2 |
7 | アリゲーターガー | Atractosteus spatula | ◎ | 4 |
8 | ロングノーズガー | Lepisosteus osseus | ○ | 4 |
9 | スポッテッドガー | Lepisosteus oculatus | ○ | 5 |
10 | ニューギニアウナギ | Anguilla bicolor pacifica | ○ | 5 |
11 | ニホンウナギ | Anguilla japonica | ○ | 8 |
12 | オオウナギ | Anguilla marmorata | ◎ | 6 |
13 | コゲウツボ | Uropterygius concolor | ○ | 3 |
14 | ナミダカワウツボ | Echidna rhodochilus | ○ | 1 |
15 | ニシン | Clupea pallasii | ○ | 6 |
16 | ドロクイ | Nematalosa japonica | ○ | 2 |
17 | エツ | Coilia nasus | ○ | 7 |
18 | コイ(飼育品種) | Cyprinus carpio | ◎ | 19 |
19 | コイ(ノゴイ) | Cyprinus carpio | ○ | 19 |
20 | ゲンゴロウブナ | Carassius cuvieri | ◎ | 3 |
21 | キンギョ | Carassius auratus | ◎ | 14 |
22 | ニゴロブナ | Carassius auratus grandoculis | ○ | 2 |
23 | ナガブナ | Carassius buergeri subsp. 1 | × | – |
24 | キンブナ | Carassius auratus subsp KINBUNA | ○ | 3 |
25 | オオキンブナ | Carassius buergeri buergeri | ○ | – |
26 | ギンブナ | Carassius auratus langsdorfii | ○ | 3 |
27 | フナ属の一種(琉球列島) | Carassius sp. | × | – |
28 | ミヤコタナゴ | Tanakia tanago | ◎ | 2 |
29 | ヤリタナゴ | Tanakia lanceolata | ◎ | 7 |
30 | アブラボテ | Tanakia limbata | ○ | 5 |
31 | カネヒラ | Acheilognathus rhombeus | ○ | 4 |
32 | オオタナゴ | Acheilognathus macropterus | ○ | 4 |
33 | イチモンジタナゴ | Acheilognathus cyanostigma | ◎ | 3 |
34 | タナゴ | Acheilognathus melanogaster | ○ | 1 |
35 | イタセンパラ | Acheilognathus longipinnis | ○ | 1 |
36 | ミナミアカヒレタビラ | Acheilognathus tabira jordani | ○ | 2 |
37 | セボシタビラ | Acheilognathus tabira nakamurae | ○ | 2 |
38 | シロヒレタビラ | Acheilognathus tabira tabira | ○ | 2 |
39 | アカヒレタビラ | Acheilognathus tabira erythropterus | ○ | 1 |
40 | キタノアカヒレタビラ | Acheilognathus tabira tohokuensis | ○ | 1 |
41 | ゼニタナゴ | Acheilognathus typus | ○ | 2 |
42 | タイリクバラタナゴ | Rhodeus ocellatus ocellatus | ◎ | 4 |
43 | ニッポンバラタナゴ | Rhodeus ocellatus kurumeus | ○ | 3 |
44 | スイゲンゼニタナゴ | Rhodeus atremius suigensis | ○ | 1 |
45 | カゼトゲタナゴ | Rhodeus atremius atremius | ○ | 2 |
46 | ハクレン | Hypophthalmichthys molitrix | ○ | 30 |
47 | コクレン | Hypophthalmichthys nobilis | ○ | 37 |
48 | ワタカ | Ischikauia steenackeri | ◎ | 2 |
49 | パールダニオ | Danio albolineatus | ○ | 1 |
50 | ゼブラダニオ | Danio rerio | ◎ | 9 |
51 | カワバタモロコ | Hemigrammocypris neglectus | ○ | 2 |
52 | ハス | Opsariichthys uncirostris uncirostris | ○ | 1 |
53 | オイカワ | Zacco platypus | ◎ | 13 |
54 | カワムツ | Nipponocypris temminckii | ○ | 5 |
55 | ヌマムツ | Nipponocypris sieboldii | ○ | 4 |
56 | ヒナモロコ | Aphyocypris chinensis | ◎ | 1 |
57 | ソウギョ | Ctenopharyngodon idella | ○ | 5 |
58 | アオウオ | Mylopharyngodon piceus | ○ | 7 |
59 | ヤチウグイ | Rhynchocypris percnurus sachalinensis | ◎ | 5 |
60 | アブラハヤ | Rhynchocypris lagowskii steindachneri | ◎ | 6 |
61 | ヤマナカハヤ | Phoxinus lagowskii yamamotis | × | – |
62 | タカハヤ | Rhynchocypris oxycephalus jouyi | ◎ | 8 |
63 | ジュウサンウグイ | Tribolodon brandtii brandtii | ○ | 2 |
64 | マルタ | Tribolodon brandtii maruta | ○ | 1 |
65 | ウケクチウグイ | Tribolodon nakamurai | ○ | 1 |
66 | エゾウグイ | Tribolodon sachalinensis | ○ | 5 |
67 | ウグイ | Tribolodon hakonensis | ◎ | 3 |
68 | モツゴ | Pseudorasbora parva | ○ | 4 |
69 | シナイモツゴ | Pseudorasbora pumila | ◎ | 3 |
70 | ウシモツゴ | Pseudorasbora pugnax | ○ | 1 |
71 | アブラヒガイ | Sarcocheilichthys biwaensis | ○ | 1 |
72 | カワヒガイ | Sarcocheilichthys variegatus variegatus | ○ | 2 |
73 | ビワヒガイ | Sarcocheilichthys variegatus microoculus | ○ | 2 |
74 | ムギツク | Pungtungia herzi | ○ | 3 |
75 | タモロコ | Gnathopogon elongatus elongatus | ◎ | 6 |
76 | スワモロコ | Gnathopogon elongatus suwae | × | – |
77 | ホンモロコ | Gnathopogon caerulescens | ○ | 1 |
78 | ゼゼラ | Biwia zezera | ○ | 3 |
79 | ヨドゼゼラ | Biwia yodoensis | ○ | 1 |
80 | カマツカ | Pseudogobio esocinus | ◎ | 10 |
81 | ナガレカマツカ | Pseudogobio agathonectris | ◎ | 1 |
82 | スナゴカマツカ | Pseudogobio polysticta | ○ | 1 |
83 | ツチフキ | Abbottina rivularis | ◎ | 13 |
84 | ズナガニゴイ | Hemibarbus longirostris | ○ | 2 |
85 | コウライニゴイ | Hemibarbus labeo | ◎ | 6 |
86 | ニゴイ | Hemibarbus barbus | ◎ | 2 |
87 | イトモロコ | Squalidus gracilis gracilis | ◎ | 3 |
88 | デメモロコ | Squalidus japonicus japonicus | ○ | 3 |
89 | スゴモロコ | Squalidus chankaensis biwae | ◎ | 3 |
90 | コウライモロコ | Squalidus chankaensis tsuchigae | ○ | 5 |
91 | アカヒレ | Tanichthys albonubes | ○ | 1 |
92 | ドジョウ | Misgurnus anguillicaudatus | ◎ | 26 |
93 | キタドジョウ | Misgurnus sp CladeA | ◎ | 8 |
94 | ヒョウモンドジョウ | Misgurnus sp OK | × | – |
95 | シノビドジョウ | Misgurnus sp IR | ◎ | 1 |
96 | ドジョウ(大陸産) | Misgurnus anguillicaudatus Clade B-1 | ○ | – |
97 | カラドジョウ | Paramisgurnus dabryanus | ◎ | 10 |
98 | オオシマドジョウ | Cobitis sp BIWAE typeA | ○ | 5 |
99 | ニシシマドジョウ | Cobitis sp BIWAE typeB | ◎ | 12 |
100 | ヒガシシマドジョウ | Cobitis sp BIWAE typeC | ○ | 5 |
101 | トサシマドジョウ | Cobitis sp BIWAE typeD | × | 2 |
102 | サンヨウコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii minamorii | ○ | 2 |
103 | トウカイコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii tokaiensis | ○ | 3 |
104 | ビワコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii oumiensis | ○ | 1 |
105 | ヨドコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii yodoensis | × | – |
106 | サンインコガタスジシマドジョウ | Cobitis minamorii saninensis | ○ | 1 |
107 | チュウガタスジシマドジョウ | Cobitis striata striata | ○ | 2 |
108 | オンガスジシマドジョウ | Cobitis striata fuchigamii | × | 1 |
109 | ハカタスジシマドジョウ | Cobitis striata hakataensis | × | 1 |
110 | アリアケスジシマドジョウ | Cobitis kaibarai | ◎ | 2 |
111 | オオガタスジシマドジョウ | Cobitis magnostriata | ○ | 1 |
112 | タンゴスジシマドジョウ | Cobitis takenoi | ○ | 1 |
113 | ヤマトシマドジョウ | Cobitis matsubarae | ◎ | 2 |
114 | ヤマトシマドジョウA型 | Cobitis sp ‘yamato’ complex typeA | × | 1 |
115 | オオヨドシマドジョウ | Cobitis sakahoko | ○ | 1 |
116 | イシドジョウ | Cobitis takatsuensis | ◎ | 3 |
117 | ヒナイシドジョウ | Cobitis shikokuensis | ◎ | 1 |
118 | アジメドジョウ | Niwaella delicata | ◎ | 3 |
119 | フクドジョウ | Barbatula barbatula | ◎ | 2 |
120 | エゾホトケドジョウ | Lefua nikkonis | ◎ | 2 |
121 | ヒメドジョウ | Lefua costata | ○ | 3 |
122 | ホトケドジョウ | Lefua echigonia | ○ | 7 |
123 | ナガレホトケドジョウ | Lefua torrentis | ○ | 2 |
124 | トウカイナガレホトケドジョウ | Lefua tokaiensis | ○ | 1 |
125 | アユモドキ | Parabotia curta | ◎ | 2 |
126 | ギギ | Tachysurus nudiceps | ◎ | 1 |
127 | ネコギギ | Tachysurus ichikawai | ◎ | 1 |
128 | ギバチ | Tachysurus tokiensis | ○ | 3 |
129 | アリアケギバチ | Tachysurus aurantiacus | × | 1 |
130 | コウライギギ | Tachysurus fulvidraco | ○ | 3 |
131 | イワトコナマズ | Silurus lithophilus | ○ | 1 |
132 | タニガワナマズ | Silurus tomodai | ○ | 1 |
133 | ビワコオオナマズ | Silurus biwaensis | ○ | 1 |
134 | ナマズ | Silurus asotus | ◎ | 13 |
135 | アカザ | Liobagrus reinii | ◎ | 1 |
136 | チャネルキャットフィッシュ | Ictalurus punctatus | ○ | 3 |
137 | ヒレナマズ | Clarias fuscus | ○ | 3 |
138 | マダラロリカリア | Pterygoplichthys disjunctivus | ○ | 2 |
139 | シシャモ | Spirinchus lanceolatus | ○ | 2 |
140 | キュウリウオ | Osmerus dentex | ○ | 1 |
141 | ワカサギ | Hypomesus nipponensis | ○ | 1 |
142 | イシカリワカサギ | Hypomesus olidus | ○ | 1 |
143 | アユ | Plecoglossus altivelis altivelis | ◎ | 3 |
144 | リュウキュウアユ | Plecoglossus altivelis ryukyuensis | × | – |
145 | アリアケシラウオ | Salanx ariakensis | ○ | 2 |
146 | アリアケヒメシラウオ | Neosalanx reganius | × | – |
147 | イトウ | Hucho perryi | ○ | 1 |
148 | ブラウントラウト | Salmo trutta | ○ | 5 |
149 | カワマス | Salvelinus fontinalis | ○ | 4 |
150 | レイクトラウト | Salvelinus namaycush | ○ | 2 |
151 | アメマス | Salvelinus leucomaenis leucomaenis | ◎ | 1 |
152 | ヤマトイワナ | Salvelinus leucomaenis japonicus | ○ | 2 |
153 | ニッコウイワナ | Salvelinus leucomaenis pluvius | ◎ | 2 |
154 | ゴギ | Salvelinus leucomaenis imbrius | ○ | 1 |
155 | オショロコマ | Salvelinus malma krascheninnikovi | ○ | 1 |
156 | ミヤベイワナ | Salvelinus malma miyabei | × | 1 |
157 | ニジマス | Oncorhynchus mykiss | ○ | 10 |
158 | サケ | Oncorhynchus keta | ○ | 4 |
159 | ヒメマス | Oncorhynchus nerka | ○ | 6 |
160 | クニマス | Oncorhynchus kawamurae | × | – |
161 | カラフトマス | Oncorhynchus gorbuscha | ○ | 4 |
162 | サクラマス(ヤマメ) | Oncorhynchus masou masou | ◎ | 2 |
163 | サツキマス(アマゴ) | Oncorhynchus masou ishikawae | ○ | 2 |
164 | ビワマス | Oncorhynchus masou rhodurus | ◎ | 1 |
165 | タウナギ(本土産) | Monopterus albus | ○ | 5 |
166 | タウナギ(沖縄産) | Monopterus sp. | × | – |
167 | イトヨ | Gasterosteus aculeatus aculeatus | ○ | 1 |
168 | ハリヨ | Gasterosteus aculeatus microcephalus | ○ | 1 |
169 | ニホンイトヨ | Gasterosteus nipponicus | ○ | 1 |
170 | エゾトミヨ | Pungitius tymensis | ○ | 3 |
171 | ミナミトミヨ | Pungitius kaibarae | ○ | 4 |
172 | トミヨ属雄物型 | Pungitius sp Omono | ○ | 1 |
173 | トミヨ属淡水型 | Pungitius sp Freshwater | ○ | 1 |
174 | トミヨ属汽水型 | Pungitius sp Brackish | ○ | 1 |
175 | ムサシトミヨ | Pungitius sp MUSASHI TOMIYO | ○ | 1 |
176 | アミメカワヨウジ | Hippichthys heptagonus | ◎ | 2 |
177 | ホシイッセンヨウジ | Microphis argulus | × | – |
178 | ヒメテングヨウジ | Microphis jagorii | ○ | – |
179 | タニヨウジ | Microphis retzii | × | – |
180 | カワボラ | Cestraeus plicatilis | ○ | 1 |
181 | ナガレフウライボラ | Crenimugil heterocheilos | × | – |
182 | オニボラ | Ellochelon vaigiensis | ◎ | 3 |
183 | アンピンボラ | Chelon subviridis | ◎ | 1 |
184 | カマヒレボラ | Moolgarda pedaraki | ◎ | 3 |
185 | モンナシボラ | Moolgarda engeli | ○ | 1 |
186 | ペヘレイ | Odontesthes bonariensis | ○ | 2 |
187 | ネッタイイソイワシ | Atherinomorus duodecimalis | ◎ | 2 |
188 | ミナミギンイソイワシ | Hypoatherina temminckii | ○ | 2 |
189 | グリーンソードテール | Xiphophorus hellerii | ◎ | 3 |
190 | カダヤシ | Gambusia affinis | ○ | 2 |
191 | グッピー | Poecilia reticulata | ○ | 4 |
192 | ミナミメダカ | Oryzias latipes | ◎ | 18 |
193 | キタノメダカ | Oryzias sakaizumii | ○ | 9 |
194 | コモチサヨリ | Zenarchopterus dunckeri | ◎ | 3 |
195 | クルメサヨリ | Hyporhamphus intermedius | ○ | 2 |
196 | アゴヒゲオコゼ | Tetraroge barbata | ◎ | 1 |
197 | ヒゲソリオコゼ | Tetraroge nigra | × | – |
198 | アカメ | Lates japonicus | ◎ | 3 |
199 | インドタカサゴイシモチ | Pseudambassis ranga | ◎ | – |
200 | ナンヨウタカサゴイシモチ | Ambassis interrupta | × | 1 |
201 | ハナダカタカサゴイシモチ | Ambassis macracanthus | × | – |
202 | オヤニラミ | Coreoperca kawamebari | ○ | 2 |
203 | スズキ | Lateolabrax japonicus | ◎ | 5 |
204 | シラヌイハタ | Epinephelus bontoides | ◎ | 2 |
205 | ブルーギル | Lepomis macrochirus | ○ | 5 |
206 | オオクチバス | Micropterus salmoides | ◎ | 3 |
207 | コクチバス | Micropterus dolomieu | ◎ | 3 |
208 | カガミテンジクダイ | Yarica hyalosoma | ○ | – |
209 | ワキイシモチ | Fibramia lateralis | ○ | – |
210 | ヒルギヌメリテンジクダイ | Pseudamia amblyuroptera | ◎ | 1 |
211 | ウラウチフエダイ | Lutjanus goldiei | × | – |
212 | ダイダイコショウダイ | Plectorhinchus albovittatus | × | – |
213 | ナンヨウチヌ | Acanthopagrus pacificus | ◎ | 1 |
214 | アオギス | Sillago parvisquamis | ○ | 2 |
215 | アトクギス | Sillaginops macrolepis | × | 1 |
216 | テッポウウオ | Toxotes chatareus | × | 2 |
217 | カワスズメ | Oreochromis mossambicus | ○ | 1 |
218 | ナイルティラピア | Oreochromis niloticus | ○ | 11 |
219 | ジルティラピア | Coptodon zillii | ○ | 2 |
220 | ヨコシマイサキ | Mesopristes cancellatus | ○ | 2 |
221 | ニセシマイサキ | Mesopristes argenteus | × | 1 |
222 | シミズシマイサキ | Mesopristes iravi | × | 1 |
223 | トゲナガユゴイ | Kuhlia munda | × | – |
224 | ヤマノカミ | Trachidermus fasciatus | ○ | 2 |
225 | カマキリ | Cottus kazika | ○ | 3 |
226 | カジカ | Cottus pollux | ◎ | 6 |
227 | カジカ中卵型 | Cottus sp ME | ○ | 1 |
228 | カジカ小卵型 | Cottus reinii | ◎ | 4 |
229 | カンキョウカジカ | Cottus hangiongensis | ○ | 3 |
230 | ハナカジカ | Cottus nozawae | ◎ | 3 |
231 | エゾハナカジカ | Cottus amblystomopsis | ○ | 4 |
232 | ウラウチヘビギンポ | Enneapterygius cheni | × | – |
233 | ヒルギギンポ | Omox biporos | × | – |
234 | ゴマクモギンポ | Omobranchus elongatus | ◎ | 1 |
235 | カワギンポ | Omobranchus ferox | × | – |
236 | ナリタイトヒキヌメリ | Pseudocalliurichthys ikedai | × | – |
237 | ツバサハゼ | Rhyacichthys aspro | ○ | 2 |
238 | ドンコ | Odontobutis obscura | ◎ | 10 |
239 | イシドンコ | Odontobutis hikimius | ○ | 1 |
240 | タナゴモドキ | Hypseleotris cyprinoides | ◎ | 1 |
241 | オウギハゼ | Bunaka gyrinoides | × | 1 |
242 | カワアナゴ | Eleotris oxycephala | ○ | 5 |
243 | テンジクカワアナゴ | Eleotris fusca | ◎ | 4 |
244 | エリトゲハゼ | Belobranchus belobranchus | × | – |
245 | ヤエヤマノコギリハゼ | Butis amboinensis | ○ | 1 |
246 | ジャノメハゼ | Bostrychus sinensis | ○ | 6 |
247 | ホシマダラハゼ | Ophiocara porocephala | ◎ | 2 |
248 | タメトモハゼ | Ophieleotris sp TAMETOMO HAZE | ◎ | 1 |
249 | ゴシキタメトモハゼ | Giuris sp. 2 | × | – |
250 | ドウクツミミズハゼ | Luciogobius albus | × | – |
251 | ネムリミミズハゼ | Luciogobius dormitoris | × | – |
252 | イドミミズハゼ | Luciogobius pallidus | ○ | 2 |
253 | ナガレミミズハゼ | Luciogobius fluvialis | × | – |
254 | ユウスイミミズハゼ | Luciogobius fonticola | × | 1 |
255 | ミナミヒメミミズハゼ | Luciogobius ryukyuensis | ○ | 2 |
256 | ヒモハゼ | Eutaeniichthys gilli | ◎ | 1 |
257 | シロウオ | Leucopsarion petersii | ○ | 4 |
258 | ワラスボ | Odontamblyopus lacepedii | ○ | 1 |
259 | アサガラハゼ | Caragobius urolepis | ○ | 1 |
260 | チワラスボ | Taenioides cirratus | ○ | 2 |
261 | ヒゲワラスボ | Trypauchenopsis intermedia | ○ | 2 |
262 | トカゲハゼ | Scartelaos histophorus | ○ | 1 |
263 | ムツゴロウ | Boleophthalmus pectinirostris | ○ | 3 |
264 | タビラクチ | Apocryptodon punctatus | ○ | 1 |
265 | トビハゼ | Periophthalmus modestus | ◎ | 4 |
266 | トサカハゼ | Cristatogobius lophius | ◎ | 2 |
267 | ヒメトサカハゼ | Cristatogobius aurimaculatus | × | – |
268 | クロトサカハゼ | Cristatogobius nonatoae | ○ | – |
269 | シマサルハゼ | Oxyurichthys sp. 2 | × | – |
270 | ミスジハゼ | Callogobius sp MISUJI HAZE | × | 1 |
271 | ハゼクチ | Acanthogobius hasta | ○ | 6 |
272 | ミナミアシシロハゼ | Acanthogobius insularis | × | 1 |
273 | ヨロイボウズハゼ | Lentipes armatus | ◎ | 1 |
274 | カエルハゼ | Smilosicyopus leprurus | × | – |
275 | アカボウズハゼ | Sicyopus zosterophorum | × | 1 |
276 | ヒノコロモボウズハゼ | Sicyopus auxilimentus | × | – |
277 | ルリボウズハゼ | Sicyopterus lagocephalus | ◎ | 5 |
278 | ボウズハゼ | Sicyopterus japonicus | ◎ | 7 |
279 | カキイロヒメボウズハゼ | Stiphodon surrufus | × | – |
280 | ナンヨウボウズハゼ | Stiphodon percnopterygionus | ◎ | 2 |
281 | ハヤセボウズハゼ | Stiphodon imperiorientis | × | – |
282 | コンテリボウズハゼ | Stiphodon atropurpureus | × | – |
283 | ヒスイボウズハゼ | Stiphodon alcedo | ○ | 1 |
284 | ニライカナイボウズハゼ | Stiphodon niraikanaiensis | × | – |
285 | トラフボウズハゼ | Stiphodon multisquamus | × | – |
286 | ワカケサラサハゼ | Amblygobius linki | × | – |
287 | シラヌイハゼ | Silhouettea dotui | × | – |
288 | ニセシラヌイハゼ | Silhouettea sp. | × | – |
289 | ギンポハゼ | Parkraemeria saltator | ◎ | 1 |
290 | マングローブゴマハゼ | Pandaka lidwilli | ◎ | 1 |
291 | ゴマハゼ | Pandaka sp. | × | – |
292 | カブキハゼ | Eugnathogobius mindora | × | – |
293 | フタホシハゼ | Mugilogobius fuscus | × | – |
294 | ホホグロハゼ | Mugilogobius cavifrons | ○ | 1 |
295 | ムジナハゼ | Mugilogobius mertoni | × | 1 |
296 | マサゴハゼ | Pseudogobius masago | ◎ | 2 |
297 | コクチスナゴハゼ | Pseudogobius sp KOKUCHI SUNAGO HAZE | × | 1 |
298 | エソハゼ | Schismatogobius roxasi | ◎ | 1 |
299 | シマエソハゼ | Schismatogobius ampluvinculus | × | 24 |
300 | タネカワハゼ | Stenogobius sp TANEKAWA HAZE | ◎ | 1 |
301 | ドウケハゼ | Stenogobius ophthalmoporus | × | – |
302 | クロミナミハゼ | Awaous melanocephalus | ○ | 1 |
303 | シロチチブ | Tridentiger nudicervicus | × | – |
304 | ショウキハゼ | Tridentiger barbatus | ○ | 3 |
305 | アカオビシマハゼ | Tridentiger trigonocephalus | ◎ | 5 |
306 | シモフリシマハゼ | Tridentiger bifasciatus | ○ | 4 |
307 | ヌマチチブ | Tridentiger brevispinis | ○ | 2 |
308 | チチブ | Tridentiger obscurus | ◎ | 5 |
309 | ナガノゴリ | Tridentiger kuroiwae | ◎ | 2 |
310 | タスキヒナハゼ | Redigobius balteatus | ○ | 1 |
311 | カワクモハゼ | Bathygobius sp. | × | – |
312 | ヒラヨシノボリ | Rhinogobius sp.DL | × | – |
313 | カワヨシノボリ | Rhinogobius flumineus | ○ | 3 |
314 | シマヨシノボリ | Rhinogobius nagoyae | ◎ | 2 |
315 | ルリヨシノボリ | Rhinogobius mizunoi | ◎ | 1 |
316 | アヤヨシノボリ | Rhinogobius sp MO | ○ | 1 |
317 | オオヨシノボリ | Rhinogobius fluviatilis | ◎ | 2 |
318 | クロヨシノボリ | Rhinogobius brunneus | ○ | 9 |
319 | オガサワラヨシノボリ | Rhinogobius ogasawaraensis | ○ | 1 |
320 | ゴクラクハゼ | Rhinogobius giurinus | ◎ | 8 |
321 | アオバラヨシノボリ | Rhinogobius sp BB | × | – |
322 | トウカイヨシノボリ | Rhinogobius sp TO | ○ | 1 |
323 | クロダハゼ | Rhinogobius kurodai | × | – |
324 | シマヒレヨシノボリ | Rhinogobius nagoyae | ○ | 2 |
325 | キバラヨシノボリ | Rhinogobius sp YB | ○ | 1 |
326 | ビワヨシノボリ | Rhinogobius biwaensis | ◎ | 1 |
327 | カズサヨシノボリ | Rhinogobius sp KZ | ○ | 2 |
328 | オウミヨシノボリ | Rhinogobius sp OM | ○ | 1 |
329 | 旧トウヨシノボリ類 | Rhinogobius sp OR | ◎ | 4 |
330 | アゴヒゲハゼ | Glossogobius bicirrhosus | × | – |
331 | スダレウロハゼ | Glossogobius circumspectus | × | 2 |
332 | コンジキハゼ | Glossogobius aureus | ○ | 2 |
333 | フタゴハゼ | Glossogobius sp | × | 1 |
334 | ホクロハゼ | Acentrogobius caninus | ○ | 4 |
335 | キララハゼ | Acentrogobius viridipunctatus | × | – |
336 | ニセツムギハゼ | Acentrogobius audax | × | – |
337 | ホホグロスジハゼ | Acentrogobius suluensis | × | – |
338 | イサザ | Gymnogobius isaza | ○ | 1 |
339 | スミウキゴリ | Gymnogobius petschiliensis | ◎ | 4 |
340 | ウキゴリ | Gymnogobius urotaenia | ◎ | 6 |
341 | シマウキゴリ | Gymnogobius opperiens | ◎ | 3 |
342 | ヘビハゼ | Gymnogobius mororanus | ○ | 2 |
343 | シンジコハゼ | Gymnogobius taranetzi | ○ | – |
344 | ジュズカケハゼ | Gymnogobius castaneus | ○ | 6 |
345 | コシノハゼ | Gymnogobius nakamurae | × | – |
346 | ムサシノジュズカケハゼ | Gymnogobius sp1 MUSASHINO JUZUKAKE HAZE | ○ | 1 |
347 | ホクリクジュズカケハゼ | Gymnogobius sp HOKURIKU JUZUKAKE HAZE | ○ | 1 |
348 | チクゼンハゼ | Gymnogobius uchidai | ○ | 2 |
349 | クボハゼ | Gymnogobius scrobiculatus | ○ | 1 |
350 | キセルハゼ | Gymnogobius cylindricus | × | 1 |
351 | エドハゼ | Gymnogobius macrognathos | ○ | 1 |
352 | ウラウチイソハゼ | Eviota ocellifer | × | 1 |
353 | ナミノコハゼ | Gobitrichinotus radiocularis | × | – |
354 | トンガスナハゼ | Kraemeria tongaensis | × | – |
355 | マイコハゼ | Parioglossus lineatus | × | – |
356 | コマチハゼ | Parioglossus taeniatus | × | – |
357 | ボルネオハゼ | Parioglossus palustris | × | 1 |
358 | コビトハゼ | Parioglossus rainfordi | × | – |
359 | ヒメサツキハゼ | Parioglossus interruptus | × | – |
360 | クジャクハゼ | Parioglossus caeruleolineatus | × | – |
361 | タイワンキンギョ | Macropodus opercularis | ○ | 2 |
362 | チョウセンブナ | Macropodus ocellatus | ○ | 2 |
363 | コウタイ | Channa asiatica | ○ | 3 |
364 | タイワンドジョウ | Channa maculata | ○ | 4 |
365 | カムルチー | Channa argus | ◎ | 16 |
366 | クサフグ | Takifugu alboplumbeus | ◎ | 1 |
377 | カタクチイワシ | Engraulis japonicus | Y | 5 |
378 | マアジ | Trachurus japonicus | Y | 6 |
379 | ボラ | Mugil cephalus | Y | 16 |
※注意点
作業が半自動で、なおかつデータごとに学名表記の揺らぎがあるので、配列数は必ずしも正しいものではありません。また、NCBIの配列データ更新が活発なので、すぐに配列数は変わると思います。